红掌(Anthurium andraeanum)细胞工程研究进展及其在育种上的应用

红掌是一种重要的观花和观叶兼具的草本植物。植物离体培养技术已经成为红掌繁殖主要采用的方法,绝大部分品种可以通过组织培养实现再生,其推动了红掌细胞工程育种的发展。本综述总结了红掌细胞组织培养繁殖途径,包括直接获得无菌苗途径、愈伤组织诱导和不定芽再生途径、体细胞胚胎发生途径、原球茎和类原球茎途径、原生质体途径等方面的研究进展,及其花器官培养,多倍体诱导,物理化学诱变,遗传转化,体细胞无性系变异及筛选的研究在育种中的应用。并提出了红掌细胞工程研究当前存在的问题和以后的研究方向,以期为将来红掌的研究提供借鉴。     

美花石斛原球茎增殖及分化的研究

将美花石斛原球茎培养于含有不同生长调节物质的SH培养基上,结果发现,不同生长调节物质对美花石斛原球茎分化的不同阶段产生不同的影响.含有香蕉提取物和BAP2.0 mg/L+KT2.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L的SH培养基对鲜重增加影响较显著;白萝卜汁对叶片分化有一定的促进作用;含有酵母提取物的SH培养基对增殖芽和不定根分化效果最好;马铃薯、香蕉和椰子汁对生根分化影响较大.建议在美花石斛原球茎不同分化阶段,根据其生长和分化需要,继代培养于相应的培养基上,以获得优质美花石斛组培苗.     

药用石斛花粉生活力的研究

［目的］探讨药用石斛不同时期、不同贮存时间的花粉生活力。［方法］以玫瑰石斛、鼓槌石斛、细茎石斛和金钗石斛4个药用石斛种为材料，对蕾期、初花期、盛花期和谢花期4个时期，在白天平均温度25℃、夜间平均温度13℃的自然干燥条件下放置1、5、12、24、48h的花粉生活力进行测定。［结果］4个种之间花粉生活力差异不大，均以初花期花粉生活力最强，盛开期次之，蕾期第3，谢花期最低；初花期和盛花期的花粉放置1~48h均有良好的生活力。［结论］该研究为药用石斛人工辅助授粉、有性杂交育种工作的开展提供理论依据。     

国产石斛属植物亲缘关系的AFLP分析

 采用AFLP技术对我国38种石斛属植物进行亲缘关系分析，从64对选择性引物中筛选出8对引物组合，共扩增出1 644个位点，其中多态性位点1 639，占总扩增位点的99.7%，说明我国石斛属植物遗传多态性水平很高。聚类分析结果表明，石斛组和黑毛组并没有形成独立的分支；剑叶组和圆柱叶组植物共同构成一个分支，并与其它组之间的相似度较低，说明该两组与其它组之间的亲缘关系较远；禾叶组、草叶组和叉唇组均形成独立的分支， 有向各自的演化方向发展的趋势。国产石斛属植物亲缘关系比较复杂，并非是一个单系类群，可能存在一些并系类群或多系类群。     

生物技术在我国石斛产业上的应用

石斛是重要的药用和观赏植物,对植物快繁技术、原生质体融合和基因转化等生物技术在石斛产业化中的应用作一综述,并对石斛的开发利用和产业化生产中存在问题和补救措施作了分析.     

不同栽培基质对束花石斛根组织构造的影响

[目的]探讨不同栽培基质对药用石斛根生长发育的影响。[方法]以野生束花石斛为研究材料,采用5种栽培基质（树皮、锯末、碎石块、清水和营养液）对束花石斛进行栽培,观察不种栽培基质条件下根的内部组织构造的发育变化。[结果]保水性能较差的碎石块中的束花石斛根的根被细胞层数多,高达7~8层,而其他基质的仅为3~4层。其外皮层、内皮层、皮层薄壁细胞以及维管束薄壁细胞的细胞壁较厚,且小而排列紧密,具备了保水性的结构特征,而水培的根组织构造却表现相反,说明不同栽培基质对束花石斛根内部组织构造的发育有一定的影响。[结论]该研究为植物生长发育与栽培环境的相关性研究提供了解剖学依据。     

珍稀药用植物铁皮石斛的学名考证

通过文献查阅与实地调查相结合的方法,比较分析铁皮石斛(Dendrobium officinale Kimura et Migo)的原始记载、形态特征以及地理分布。结果表明,我国境内分布的铁皮石斛是由K.Kimura et H.Migo于1936年正式发表的新种,其花萼和花瓣呈黄绿色,唇瓣浅白色,中上部有紫色斑块;该药用植物在我国长江以南各省区已有广泛种植生产和市场流通;而在我国很多著作中记载的铁皮石斛(Dendrobium candidum)是于1838年由Wall.在John Lindley的著作中正式发表的新种,其花萼、花瓣和唇瓣均为白色,唇瓣无紫色斑块,主要分布于印度锡金-喜马拉雅和梅加拉亚地区。说明我国珍稀药用植物铁皮石斛的合法学名为Dendrobium officinale Kimura et Migo。     

豇豆再生体系的建立

以丰产2号豆角下胚轴、上胚轴、茎段、真叶和顶芽作外植体进行了豇豆再生体系研究,结果表明,豇豆组织培养以愈伤组织诱导培养基和继代培养基为MS 6-BA 2.0 mg/L NAA 2.0 mg/L,不定芽诱导培养基为MS 6-BA2.0 mg/L NAA 0.2 mg/L,生根培养基为1/2MS 6-BA 0.2 mg/L 2,4-D 2.0 mg/L较适宜。