鸡球虫基因工程疫苗的研究进展(英文)

鸡球虫病是严重危害养禽业的一种原虫病。目前鸡球虫病的防治主要是依靠化学药物和活球虫疫苗,但药物防治存在抗药性和药物残留,球虫活疫苗具有致病性、生产成本高、可能产生"返强"的弊端。而基因工程疫苗则具有易操作、稳定、安全和高效等优点,成为预防鸡球虫病的研究热点。该文主要从鸡球虫基因疫苗的研究现状、免疫机理、免疫效果影响因素、细胞因子佐剂应用等方面进行了综述,以便为鸡球虫基因疫苗的研究与应用提供参考。     

兔球虫病药物防治研究进展

兔球虫病是严重危害养兔业发展的寄生虫病之一。长期以来,兔球虫病主要依靠化学药物和中草药等进行防治,由于球虫极易产生耐药性,给药物防治带来了困难。论文从兔球虫生物学特性、防治兔球虫病的药物等方面做一综述。     

江苏丹阳等县猪球虫调查报告

本文报导了江苏省丹阳等三县猪球虫的种类以及不同年龄猪的球虫感染率。共查276头猪,球虫阳性的95头,阳性率为34.4％。从276头不同年龄的猪共检到1科2属11种球虫卵囊,其中艾美尔属Eimeria9种:猪艾美尔球虫E.suis,蒂氏艾美尔球虫E.debiecki,光滑艾美尔球虫E.cerdonis,粗糙艾美尔球虫E.scabra,四川艾美尔球虫E.szechuanensis,豚艾美尔球虫E.porci,最小艾美尔球虫E.perminuta,新蒂氏艾美尔球虫E.neodebrleki,有刺艾美尔球虫E.spinosa。等孢属I sospora两种,即猪等孢球虫I.suis,阿拉木图等孢球虫I.almataensis。其中猪艾美尔球虫,光滑艾美尔球虫,豚艾美尔球虫,最小艾美尔球虫,新蒂氏艾美尔球虫,有刺艾美尔球虫和猪等孢球虫7种为国内首次报道。     

生物技术在鸡球虫免疫研究中的应用

就近几年开发的球虫疫苗和球虫免疫中所涉及的分子细胞生物学、分子免疫学和功能基因组学的相关技术进行了阐述。     

对柔嫩艾美耳球虫敏感株与抗药株ATP酶活性的检测

采用ATP酶试剂盒对柔嫩艾美耳球虫(Eimeria tenella)11种敏感株与抗药株的4种ATP酶活性进行了检测。结果表明,鸡球虫不仅具有活跃的ATP酶系统,而且其活性因球虫对药物敏感性的不同而表现强弱不同。敏感株的ATP酶活性最强,而各抗药株的ATP酶活性均有不同程度的降低,尤其是氯化锂(Na -K -ATP酶抑制剂)和利多卡因(Na 通道阻断剂)参与诱导产生的马杜霉素诱导抗药株和盐霉素诱导抗药株的Na -K -ATP酶,Mg2 -ATP酶,Ca2 -ATP酶和Ca2 -Mg2 -ATP酶的活性极显著低于相同来源的抗药株和敏感株的活性。本文研究表明,虫株对药物的敏感性可能与ATP酶活性有关,检测ATP酶活性可作为判别柔嫩艾美耳球虫对离子载体类抗球虫药物敏感性或抗药性的指标之一。     

中国水牛两种住肉孢子虫包囊超微结构的比较研究

本文对采自我国湖南水牛食道肌的大、小两种住肉孢子虫包囊的超微结构进行了研究。两种包囊的细胞(母细胞和缓殖子)未发现有明显的结构区别,而包囊壁的结构则揭示出明显的差异。大包囊的原囊壁向表面皱褶形成菜椰花样的突起,突起内含纤丝,突起表面有凹陷;而小包囊的原囊壁皱褶形成长指形的突起,突起内不含纤丝,倒伏在包囊表面,突起壁是平滑的,无凹陷。这一观察表细:我国水牛体内的大包囊属于梭形住肉孢子虫,小包囊可能是枯氏住肉孢子虫。     

鸡球虫病免疫学研究进展

鸡球虫病是严重危害养禽业的一种寄生虫病。一直以来,鸡球虫病主要依靠药物来进行防治。但是,随着球虫抗药性问题的日益严重,抗球虫新药开发困难及人们对食品安全的关注,药物在球虫病控制中的作用越来越受到限制,因而用免疫方法来控制鸡球虫病日益受到重视,并有望成为主要的技术手段。目前鸡球虫免疫学研究主要集中在鸡球虫免疫原性、宿主免疫应答及寻找有效的鸡球虫保护性抗原等方面。近年来随着分子生物学和现代生物技术的发展,鸡球虫基因工程疫苗以其独特的优势显示其在未来球虫病控制中的诱人前景,并可能取代传统疫苗而成为鸡球虫病防治的主要手段。     

无角多赛特绵羊球虫感染情况和种类调查初报

应用饱和盐水漂浮法和麦克马斯特法对河南某种羊场新引进的82只1岁左右无角多赛特绵羊球虫感染情况和种类进行了调查,结果表明:10圈绵羊均感染球虫,感染率28.57%￣100%,平均为84.2%(69/82);多为2￣5种球虫混和感染;平均OPG值为839.03(200￣4200)。共检出11种艾美耳球虫,分别是:韦不理吉艾美耳球虫(Eimeria weybridgensis)、巴库艾美耳球虫(E.bakuensis)、小型艾美耳球虫(E.parva)、类绵羊艾美耳球虫(E.ovinodalis)、颗粒艾美耳球虫(E.granulosa)、槌形艾美耳球虫(E.crandllis)、阿撒他艾美耳球虫(E.ahsata)、浮氏艾美耳球虫(E.faurei)、贡氏艾美耳球虫(E.gon-zalezi)、爱缪拉艾美耳球虫(E.aemula)、苍白艾美耳球虫(E.pallida),其中前4种为优势虫种。用Miaspro图象分析处理系统软件对各种卵囊进行了测量,并进行了显微照相和形态描述。     

Immunostimulatory complexes containing Eimeria tenella antigens and low toxicity plant saponins induce antibody response and provide protection from challenge in broiler chickens

Immunostimulating complexes (ISCOMs) are unique multimolecular structures formed by encapsulating antigens, lipids and triterpene saponins and are one of the most successful antigen delivery systems for microbial antigens. In the current study, both the route of administration and the antigen concentration of ISCOMs, containing Eimeria tenella antigens and saponins from native plants, were evaluated in their ability to stimulate humoral immunity and to protect chickens against a challenge infection with E. tenella. Broiler chickens were immunized with ISCOM preparations containing E. tenella antigens and the purified saponins Gg6, Ah6 and Gp7 isolated from Glycyrrhiza glabra, Aesculus hippocastanum and Gipsophila paniculata, respectively. The effects of the route of administration, dose of antigen and type of saponin used for construction of ISCOMs were evaluated for ability to stimulate serum IgG and IgM and to protect chickens against a homologous challenge. A single intranasal immunization was the most effective route for administering ISCOMs although the in ovo route was also quite effective. Dose titration experiments demonstrated efficacy after single immunization with various ISCOM doses but maximum effects were observed when ISCOMs contain 5–10 μg antigen. Immunization of birds by any of the three routes with E. tenella antigens alone or antigens mixed with alum hydroxide adjuvant resulted in lower serum antibody and reduced protection to challenge relative to immunization with ISCOMs. Overall the results of this study confirm that significant immunostimulation and protection to challenge are achieved by immunization of chickens with ISCOMs containing purified saponins and native E. tenella antigens and suggest that ISCOMs may be successfully used to develop a safe and effective vaccine for prevention of avian coccidiosis.