替米考星及其他抗菌药对鸡毒支原体的体外联合抑菌试验

鸡毒支原体(Mycoplasma gallisepticum,MG)是禽类最主要的病原菌之一,能引起鸡、火鸡及其它禽类的慢性呼吸道病(Chromic respiratory disease,CRD)和火鸡传染性窦炎,造成禽体生长受阻、产蛋率下降;而且鸡毒支原体还常与其它多种病原体混合感染,加重病禽发病率和死亡率,给养禽业造成极大的经济损失[1].     

各版中国兽用生物制品规程中剩余水分测定方法的比较试验

按照中国兽用生物制品规程1973年版/1985年版、1992年版、2000年版中规定的剩余水分测定检验方法,用同种同批产品分别进行剩余水分测定及对数据进行生物统计学分析,结果表明差异均不显著.     

2002年全国兽用生物制品抽检产品质量分析

2002年度，中国兽医药品监察所抽检了20个省市中26家企业生产的200批兽用生物制品，经检验，合格产品有195批，合格率为97．5％，与近几年相比，产品质量有所提高。     

3种禽源支原体替米考星耐药株的体外诱导及23SrRNA基因V域碱基突变分析

作者拟探讨禽源支原体对替米考星耐药的分子机制.体外诱导得到鸡毒支原体(R株、PG31株和S6株)、鸡滑液支原体、衣阿华支原体的替米考星耐药株;PCR扩增原始敏感株和诱导耐药株的23S rRNA基因V域,测序分析耐药相关碱基突变情况.结果鸡毒支原体R株、PG31株、S6株、鸡滑液支原体、衣阿华支原体分别通过9代、8代、6代、14代、9代诱导获得替米考星耐药(≥128 μg·mL-1)株;3种禽源支原体替米考星诱导耐药株均对大环内酯类药物表现交叉耐药,23S rRNA基因发生A2503T突变的诱导耐药株对截短侧耳素类、氯霉素类药物的敏感性明显降低.诱导获得的替米考星耐药鸡毒支原体R株发生了A2058G和A2503T突变,PG31株发生了A2058G和A2059G突变,S6株发生了A2058G和A2503T突变;而诱导获得的替米考星耐药鸡滑液支原体发生了G2162A突变,衣阿华支原体发生了A2059C突变.本研究表明鸡毒支原体和衣阿华支原体在体外较易经替米考星诱导产生耐药性,而鸡滑液支原体相对较难.菌株23S rRNA基因V域2 058、2 059、2 503位点的碱基突变与替米考星耐药表型有密切关系.     

阿莫西林、硫酸黏菌素混悬注射液无菌检查方法研究

目的建立阿莫西林、硫酸黏菌素混悬注射液的无菌检查方法。方法按《中国兽药典》2005年版一部附录进行试验。结果采用薄膜过滤法,每管培养基中加入不少于100万单位的青霉素酶,以1%聚山梨酯80的0.1%蛋白胨水溶液冲洗液,选择冲洗量为300mL,可消除样品对各菌株的抗菌活性。结论阿莫西林、硫酸黏菌素混悬注射液可用该方法进行无菌检查。     

恩诺沙星与其他抗菌药对鸡毒支原体的体外联合抑菌试验

采用2倍稀释法测定了恩诺沙星及其他8种抗菌药对鸡毒支原体BG44T株的最小抑菌浓度（MIC）,再以棋盘法测定恩诺沙星分别与其他8种抗菌药不同联合对鸡毒支原体BG44T株的敏感性。结果显示：恩诺沙星、替米考星、泰乐菌素、吉他霉素、林可霉素、沃尼妙林、泰妙菌素、氯霉素及氟苯尼考对鸡毒支原体BG44T株的MIC分别为0．063、0．004、0．016、0．063、16、〈0．004、0．008、8、8μg／mL。在8种不同联合用药对鸡毒支原体BG44T株的药敏试验中,恩诺沙星＋替米考星、恩诺沙星＋泰乐菌素、恩诺沙星＋吉他霉素、恩诺沙星＋林可霉素、恩诺沙星＋沃尼妙林、恩诺沙星＋泰妙菌素联合表现出相加作用,恩诺沙星＋氯霉素、恩诺沙星＋氟苯尼考表现出拮抗作用。     

兽用生物制品支原体检验项近5年抽检情况分析

为了解兽用生物制品支原体污染情况,对2007-2011年全国26家兽用生物制品企业生产的22个品种141批生物制品的支原体检验监督抽检情况进行了汇总,就存在的问题进行了分析,并从合理制订监督抽检计划、完善信息监督机制、提高产品质量、开展新方法研究等四个方面提出了建议,为下一步的兽用生物制品的监督抽检工作提供参考。     

兽用生物制品批签发管理制度尚需完善

通过对全国兽用生物制品批签发管理情况的介绍,分析了批签发管理工作中存在的主要问题.针对加强批签发管理,提高兽用生物制品质量提出了几点建议,包括:依法加强对兽用生物制品的质量监督,加大批签发执行情况的监督检查;进一步完善批签发管理办法,促进批签发制度的全面实施;批签发管理与GMP监管相结合,促进兽用生物制品质量的提高;改进工作方法,缩短批签发周期,提高工作效益等.     

支原体检验用培养基质控菌株的生长曲线与世代时间测定

为了摸索用于支原体培养基检验用质控菌株的生长规律,利用活菌计数方法测定滑液支原体、猪鼻支原体不同培养时段的颜色变化单位（CCU）,并绘制生长曲线,确定世代时间。结果表明：滑液支原体菌株迟缓期在培养后6h内,对数期为培养后6—36h,稳定期为培养后36～54h,衰老期为培养54h之后,世代时间G=231．8min;猪鼻支原体菌株迟缓期在培养后6h内,对数期为培养后6—18h,稳定期为培养后18～126h,衰老期为培养126h之后,世代时间G=117．1min。通过对质控菌株生长规律的初步探索,为培养基检验及质控菌株的使用提供了参考。