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1.
乙草胺与醚磺隆混合制剂的液谱分析方法 总被引:1,自引:0,他引:1
采用反相商诳液相色谱法,以C18柱为固定相,用236nm紫外检测器定量测定局草胺和醚磺隆混合制剂的含量。本方法的变异系数分别为0.68%、1.86%;标准偏差分别为0.145、0.077;平均回收率分别为98.59%、98.81%;线笥相关系数分别为0.9993、0.9996。 相似文献
2.
土壤温度和降水量对乙草胺药效及药害的影响 总被引:4,自引:0,他引:4
田间小区试验结果表明,土壤温度对乙草胺药效和药害影响没有明显规律,降水量及除草剂用量对乙草胺的药效和药害均有一定的影响。乙草胺的药效和药害并不是随着土壤温度的升高呈现逐步增高的趋势,而是随着乙草胺用药量的增加及施药前降水量的增高而提高。如果施药前7d没有降水会显著降低乙草胺的除草效果和对大豆的药害程度。乙草胺药害可使大豆苗期株高、鲜重和叶片数有所降低,成株期株荚数、株粒数减少,导致大豆减产0%~50.6%。药害严重时可使大豆晚熟。 相似文献
3.
乙草胺对土壤脲酶动力学特征的影响 总被引:2,自引:0,他引:2
采用室内模拟试验方法,以典型棕壤为供试土壤,研究不同浓度乙草胺对土壤脲酶活性和酶动力学参数的影响。结果表明,不同浓度乙草胺能显著抑制土壤脲酶活性,并在培养的第3~6 d达到最大抑制;利用模型 y=c/(1+bx)和y=c(1+ax)/(1+bx) 对不同浓度乙草胺与土壤酶活性的关系进行拟合,证明模型y=c/(1+bx)拟合效果较好,表明乙草胺除草剂对土壤脲酶的抑制作用为完全抑制,而脲酶ED50 为13.12~75.76 mg/kg;乙草胺的施入使土壤脲酶Vmax值降低,Km值则保持不变,属于典型的非竞争性抑制。 相似文献
4.
增效剂影响土壤吸附乙草胺的研究 总被引:3,自引:0,他引:3
利用高粱芽培法,研究了增效剂对乙草胺(Acetochlor)在土壤中吸附性影响。结果表明,乙草胺的吸附性随土壤温度和土壤含水量的升高而减弱。阴离子表面活性剂、油类、Q7三类增效剂能显著降低乙草胺的吸附量,可减少1~1.5mg·kg-1的吸附量。 相似文献
5.
森林苗圃化学除草的初步研究 总被引:3,自引:0,他引:3
果尔(Oxyfluorfen)为森林苗圃优良除草剂,苗床剂量600ml/hm2(23.5%乳油),60天内除草效果达90%~96%;出苗后喷施果尔300ml/hm2混合盖草能(Haloxyfop)(12.5%乳油)300ml/hm2,除草效果更佳.氟乐灵(Frifuralin)对针叶树园地,苗期用量2250ml/hm2(48%乳油)除草效果达87%~98%,但施药后需洗苗,并复盖0.5~1.0cm的红心土对苗木安全,其残效期可达4个月左右.乙草胺(Acetochlor)防除单子叶杂草有特效,是阔叶树种苗圃的良好除草剂.除草剂使用方法简便,一般采用药土或常规喷雾施药,除草效果好,经济效益显著. 相似文献
6.
国产除草剂乙草胺在杉木苗圃应用试验 总被引:2,自引:0,他引:2
50%乙草胺乳油应用于杉木苗圃播后芽前除草效果显著,除草率达90%以上,同进口除草剂氟乐灵和果尔相比除草效果相同,但残效期为90~100天.经初步试验乙草胺适用浓度为0.500~0.625mL/m2. 相似文献
7.
8.
油菜和小麦种苗根系对乙草胺的耐性差异分析 总被引:1,自引:0,他引:1
为揭示油菜和小麦根系对乙草胺耐药性差异的原因,采用水培法研究了梯度浓度乙草胺对油菜和小麦种苗根系形态、根尖生理代谢和解剖结构的影响。结果表明,1 mg/L乙草胺对油菜根长抑制率为33.63%,而对小麦根长抑制率可达55.22%;100 mg/L乙草胺对油菜侧根抑制率为63.03%,而对小麦侧根抑制率达100.00%;经0.01 mg/L乙草胺处理后的油菜根尖细胞膜透性高于小麦,当乙草胺浓度高于0.1 mg/L后,小麦根尖细胞膜透性剧烈增加且高于油菜;在较高浓度乙草胺胁迫下,小麦根尖抗氧化酶活性均低于油菜;10 mg/L乙草胺处理下,小麦根尖的解剖结构变异较油菜明显,表现为细胞排列松散、混乱,根冠变形,分生组织细胞染色程度变浅,伸长区细胞分化提前,中柱鞘细胞木质化。研究表明,小麦的根系建成比油菜更容易受乙草胺抑制,且侧根数比根长更敏感;油菜和小麦对乙草胺耐药性差异可能与细胞膜透性、抗氧化酶活性以及根尖细胞组织分化等差异有关。 相似文献
9.
为解决乙草胺残留问题,采用连续传代富集培养的方法,从长期生产乙草胺的农药厂污染土壤中分离筛选到1株乙草胺降解菌株AC-1。经过形态学特征、生理生化特征和16S rRNA基因序列系统发育分析,菌株AC-1被鉴定为红球菌属(Rhodococcus)。菌株AC-1在48h内能将0.2 m M的乙草胺完全降解,但不能矿化乙草胺。借助LC-MS,确定乙草胺降解终产物为2-氯-N-(2-乙基-6-甲基苯基)乙酰胺(CMEPA)。菌株AC-1降解乙草胺的最适温度为30℃,最适p H值为7.5。0.1 m M的Cu2+和Hg2+对菌株AC-1降解乙草胺具有很强的抑制作用,而0.1 m M的Fe2+则对菌株AC-1降解乙草胺具有微弱的促进作用。菌株AC-1对乙草胺的降解效果与起始接种量呈正相关。菌株AC-1对甲草胺和丁草胺表现出良好的降解效果,但对异丙甲草胺的降解能力非常微弱。土壤降解试验表明,投加菌株AC-1可以明显促进土壤中乙草胺的降解。本研究为乙草胺的有效降解提供了数据和技术支持。 相似文献
10.
从生产乙草胺的农药厂排污口污泥中分离到一株乙草胺降解菌,命名为DC\|6。根据形态特征、生理生化特性以及16S rDNA系统发育分析,初步鉴定其为鞘氨醇单胞菌属(Sphingomonas sp.)。该菌能够降解甲草胺、乙草胺和丁草胺,而对于异丙甲草胺、丙草胺和异丙草胺却没有任何降解效果,48 h对丁草胺、乙草胺和甲草胺的降解率分别为76.7%、93.6%和98.6%,对甲草胺的降解效率最高,而对丁草胺的降解效率最低,表明侧链烷基长短影响着该类除草剂的降解速率,随着侧链基团碳原子的增加以及支链的增多降解效率呈下降的趋势。通过气相色谱-质谱鉴定了该菌降解乙草胺的代谢产物并分析了乙草胺的代谢途径,发现乙草胺首先N\|脱烷基形成2\|氯\|N\|(2\|乙基\|6\|甲基苯基)乙酰胺(CMEPA),然后水解生成苯胺衍生物2\|乙基\|6\|甲基苯胺(MEA),MEA能够进一步完全降解。但苯胺类化合物降解途径中的关键酶苯胺双加氧酶没有参与MEA降解代谢,表明菌株DC\|6对MEA的降解不同于已报道苯胺降解途径。 相似文献