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本研究按国际通用的方法用0.25%胰蛋白酶溶液清洗牛体外受精胚胎,然后冷冻或在室温下短期保存胚胎,检查胚胎在体外和体内的发育率,结果表明胰蛋白酶处理的胚胎与未处理胎的发育相似,说明这样的处理对胚胎活力无不良影响。 相似文献
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脱防冻剂方法对牛体外受精胚胎冷冻后成活率的影响 总被引:10,自引:0,他引:10
为了观察脱防冻剂方法对牛体外受精冷冻胚胎在体内、外发育率的影响,应用常规冷冻法在0.75mol/L甘油+0.5mol/L丙二醇溶液中冷冻受精后7、8d的囊胚,解冻后在0.25、0.5mol/L蔗糖液中二步或在0.25mol/L蔗糖液中三步脱防冻剂的胚胎孵化率(分别为68.6%、62.2%、68.7%)与用PBS/FCS六步脱防冻剂的差异不显著(70.4%,P>0.05),但在0.5mol/L蔗糖液中三步脱防冻剂后,孵化率显著降低(47.6%,P<0.01)。用0.25mol/L或0.5mol/L蔗糖或海藻糖预先使胚胎脱水后冷冻,解冻后可使胚胎直接在PBS中一步脱掉防冻剂,胚胎孵化率(45.0%~49.5%)与在0.25mol/L蔗糖液中二步脱防冻剂的相似(51.5%,P>0.05)。移植试验表明,在0.25mol/L蔗糖液中二步脱防冻剂获得的妊娠率与六步脱防冻剂相似,与在PBS中一步脱防冻剂的亦无明显差异,但妊娠率均偏低(21.4%~37.5%)。 相似文献
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本研究对我所现行的牛体外受精程序 ( IVF)应用于水牛体外受精的可行性进行了探讨。结果表明 ,水牛卵巢生长卵泡少 ,平均仅可回收 5枚卵母细胞 ,只相当于黄牛 ( 14.3个 )的1/ 3。水牛卵母细胞的体外成熟率为 51.7% ,体外受精卵裂率为 58.7% ,均极显著地低于黄牛(分别为 87.3%和 69.6% ,P<0 .0 1)。水牛卵母细胞经体外受精后 ,早期胚胎的体外发育速度较黄牛快 ,体外受精后的第 6d囊胚发育率占 36.4 % ,累计到第 7d时占 80 .7% ,极显著地高于黄牛 ( 57.6% ,P<0 .0 0 1)。水牛早期胚胎的体外囊胚发育率为 31.5% ,与黄牛的 ( 39.2 % )差异不显著 ;孵化囊胚率为 73.8% ,也与黄牛的相仿。实验结果表明 ,我所现行的牛 IVF程序应用于水牛的体外受精研究是有效、可行的 ,特别是早期胚胎的体外培养系统 ,已接近于黄牛的水平。但尚需设法提高水牛卵母细胞的体外成熟培养效果 ,以提高水牛体外受精的整体效率 相似文献
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玻璃化法冷冻保存牛体外受精胚胎 总被引:1,自引:0,他引:1
本研究探讨了玻璃化冷冻保存对牛体外受精胚胎冷冻后存活的影响。7日龄的胚胎在10%甘油+20%丙二醇的玻璃化冷冻液中,室温下停温10min,其孵化率为86.6%,与对照的83.2%相比,无明显影响(P>0.05)。然10%甘油+20%乙二醇,25%甘油+25%乙二醇及25%甘油+25%丙二醇均明显降低胚胎的孵化率(P<0.01)。7日龄胚胎经10%甘油及10%甘油+20%乙二醇依次平衡5min后,再置于25%甘油+25%乙二醇的冷冻液中,20s内投液氮玻璃化冷漠,冻后孵化率达80.8%,明显高于其它平衡方法。冷冻液为25%甘油+25%乙二醇的胚胎冻后总孵化率为72.1%,明显高于25%甘油+25%丙二醇的60.9%。这些结果表明:牛胚胎玻璃化冷冻保存的成功率在很大程度上取决于防冻剂的种类、浓度及平衡方法。 相似文献
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为了测定牛体外受精胚胎移植到受体母牛后的怀孕率和双胎率,本研究共进行了3个胚胎移植试验。试验1,测定新鲜胚胎移植后的怀孕效果。将160枚新鲜胚胎移植到80头受体母牛(每头受体接受2枚胚胎),移植后60~90d的怀孕率为65%(52/80),其中双胎率为50%(2/52)。试验2,测定经室温保存4~18h的胚胎移植后的怀孕效果。供试验用的68头受体母牛均于移植前7d(即发情当天)进行人工授精。移植时每头受体牛接受1枚胚胎。移植后40~65d的怀孕率为76.5%(52/68),其中双胎率为65.4%(34/52)。试验3,测定冷冻胚胎移植后的怀孕效果。将454枚冷冻胚胎移植到227头受体母牛,每头接受2枚冻胚。移植后50~60d的怀孕率为61.7%(140/227),其中双胎率为25%(35/140)。本研究结果表明,用完全体外化技术生产的牛胚胎移植到受体母牛后可获得满意的怀孕率和双胎率,这一技术将为加速向用牛生产的发展开辟一条崭新的途径。 相似文献
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体外受精后不同时间收集的牛胚胎的冷冻效果 总被引:2,自引:0,他引:2
比较了体外受精后不同时间收集的牛囊胚期胚胎冷冻后的存活率。试验一收集受精后第6,7,8和9天出现的胚胎,分3步加入0.75mol/L甘油和0.5mol/L丙二醇,将胚胎装入0.25mL细管后,放入已降温至5℃的冷冻机内,立即以2℃/min的速率降温至-7℃,停留5min后植冰。植冰后5min,以0.3℃/min的速率降温至-25℃,取出胚胎,并立即投入液氮中保存。解冻时,先让细管在空气中暴露10s 相似文献
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通过两个试验对体外培养成熟的牛卵母细胞进行玻璃化冷冻。试验1用10%丙二醇(PG)加上不同浓度(0%~20%)的乙二醇(EG)作为细胞内玻璃化溶液(VS1),25%PG+25%EG作为细胞外玻璃化溶液(VS2)对卵母细胞进行冷冻。结果卵母细胞的体外受精分裂率(0.9%~23.4%)均显著低于对照组(75.0%)。在处理组中,以10%PG+5%EG和10%PG+10%EG作为VS1的效果较好,分裂率分别为23.4%和22.2%,均显著高于其他处理组。试验2以10%PG+5%EG作为VS1,25%PG+25%EG作为VS2进行冷冻。解冻后在0.5mol/L或0.25mol/L蔗糖溶液中1~2步或在含防冻剂的溶液中经2~3步稀释防冻剂。卵母细胞经体外受精后,分裂率在18.2%~30.6%之间。在0.25mol/L蔗糖溶液中一步脱防冻剂的卵母细胞经体外受精、体外培养后,25个早期胚胎中有3个发育成囊胚,其它组均未发现囊胚。这些结果表明玻璃化过程对卵母细胞造成了损伤。引起损伤的原因可能是玻璃化溶液的化学毒性作用及脱防冻剂过程中卵母细胞受到的渗透压损伤。 相似文献