‘雪青’梨叶片高频再生体系的建立

 以‘雪青’梨叶片为外植体, MS为基本培养基, 培养温度(25 ±1) ℃, 光照强度2 000 lx,14 h /d, 继代周期30 d。在MS + 2,4-D 2 mg·L ^{- 1} + 6-BA 0.5 mg·L ^{- 1}培养基中, 外植体脱分化率达100% ,愈伤组织增殖倍数达12.05; 在MS + 6-BA 5 mg·L ^{- 1} + IAA 0.1 mg·L ^{- 1}中, 不定梢诱导率达100% , 在MS+ 6-BA 2 mg·L ^{- 1} + IAA 0.1 mg·L ^{- 1} +CH 100 mg·L ^{- 1}中, 1～6代不定梢平均繁殖系数达7; 在1 /2MS +IBA 2 mg·L ^{- 1} + 6-BA 0.5 mg·L ^{- 1} +AC 500 mg·L ^{- 1}中, 不定梢生根率达67.50%; 68株试管苗移栽到珍珠岩营养钵中, 30 d成活46株, 成活率为67.65 %。     

基因活化剂对紫色甘薯光合速率的影响

基因活化剂使用浓度设3个水平：375倍、750倍、1500倍稀释液；施肥时间设4个水平：浸渍种苗基部1h、1次、2次、3次叶面追肥。第3次叶面追肥1个月后测定光合速率。结果表明：3个浓度水平的光舍速率分别比对照提高了20．87％，25．31％和23．06％，4个时间水平的光合速率分别比对照提高了23．69％，22．13％，22.04％和22．81％，不同浓度和不同时间之间均无显著差异。用750倍稀释液浸渍种苗基部1h或追肥1次，即可显著提高紫色甘薯的光合速率。     

基因活化剂对紫肉甘薯根系活力的影响

基因活化剂使用浓度(A)设3个水平:375×(A1)、750×(A2)和1 500×(A3)稀释液,处理时间(B)设3个水平:浸渍苕秧基部0.5 h(B1)、1 h(B2)和2 h(B3),处理后培养在改良Hoagland培养基中,12 d后测定根系α-萘胺氧化速率、NO-3和K+吸收速率.结果表明:A1、A2和A3的α-萘胺氧化速率分别比对照(98.46μg/g·h)提高2.99,5.92和2.37倍;NO-3吸收速率分别比对照(0.23 mg/株·h)提高0.51,1.14和0.66倍;K+吸收速率分别比对照(0.12 mg/株·h)提高1.73,2.73和1.16倍.与对照相比,B1、B2和B3的α-萘腠氧化速率分别提高5.50,3.29和2.49倍;NO-3吸收速率分别提高0.60,1.09和0.63倍;K+吸收速率分别提高1.57,2.66和1.40倍.因素A、B与对照差异达极显著水平,不同水平间差异极显著(p<0.01).A2 B2是最佳水平组合,即用750倍的基因活化剂浸渍苕秧基部1 h,可显著提高紫肉甘薯的根系活力,比对照α-萘胺氧化速率、NO-3和K+吸收速率分别提高5.75,1.51,3.52倍.     

NAA和IBA处理对罗汉松插条生长及生理生化的影响

以罗汉松扦插条为实验材料,研究了水培条件下,不同质量浓度的生长调节剂吲哚丁酸(IBA)和萘乙酸(NAA)处理对其株质量、株高、生根数等形态指标及多酚氧化酶(PPO)活性、过氧化物氧化酶(POD)活性、叶绿素质量分数、根系活力等生理指标的影响.结果表明:与对照相比,不同质量浓度的IBA和NAA处理均可促进罗汉松水培插条生长,其中质量浓度为60 mg/L IBA及100 mg/L NAA促进株质量、株高效果较好,60 mg/L IBA,60mg/L NAA处理促生根效果最佳;不同质量浓度的IBA,NAA处理中,60 mg/L IBA,100 mg/L NAA的PPO活性和60mg/L IBA,100mg/L NAA的POD活性最高;40mg/L IBA和40mg/L NAA处理组中叶绿素质量分数最高;根系活力与对照组相比差异无统计学意义.因此,不同质量浓度生长调节剂的处理能有效地促进罗汉松的生长并提高PPO,POD活性及叶绿素的质量分数.     

降低西瓜试管苗玻璃化因素的优化

以西瓜为材料,采用L27(313)多因素正交设计,研究不同的基因型材料、培养温度、光照强度、培养基中BA、琼脂、蔗糖、IAA和Phl.浓度对试管苗玻璃化的影响.结果表明:培养温度的影响达极显著水平(P＜0.01),玻璃化频率15℃>35℃>25℃,15℃与25℃、35℃间差异显著(p＜0.05);材料的基因型、光照强度、培养基中BA、琼脂和蔗糖浓度的影响达显著水平,玻璃化频率2n>3n>4n,4n与2n、3n间差异显著;1000 Lx>2000 Lx>3 000 Lx,1 000 Lx与2 000、3 000 Lx间差异显著;BA 4 mg∕L>2 mg∕L>1 mg∕L,1 mg∕L与2 mg∕L、4 mg∕L间差异显著;琼脂5 g∕L>8 g∕L>11 g∕L,5 g∕L与8 g∕L、11 g∕L间差异显著;蔗糖10 g∕L>30 g∕L>50 g∕L,10 g∕L与30 g∕L、50 g∕L间差异显著.在继代培养中,降低试管苗玻璃化的综合措施是:培养温度25～35℃,光照强度2000～3000 Lx,培养基中BA≤1 mg∕L,IAA≥1 mg∕L,Phl.≥2 g∕L,琼脂8～11 g∕L,蔗糖30～50 g∕L.     

外源一氧化氮对渗透胁迫下冬瓜幼苗生理特性的影响

采用0.1～0.5 mmol/L SNf,处理,研究外源NO对20%PEG-6000 渗透胁迫下冬瓜幼苗生理特性的影响.结果表明:0.1 mmol/L SNP处理能显著缓解20%PEG-6000 的胁迫伤害,使叶片MDA含量降低62.65%,相对电导率降低28.09%,Pro含量提高14.35%,POD、CAT和SOD活性分别提高1.46倍、41.34%和14.01%.与0.1mmol/L SNP处理相比,0.3,0.5 mmol/L SNP处理缓解叶片氧化损伤和提高保护酶活性的作用明显或显著降低,0.5 mmol/L SNF抑制POD与SOD活性.     

春兰在不同营养液中的水培效应

将生长状况大致相同的春兰放在3种不同成分不同浓度的营养液中进行水培效应比较试验,观测植株的鲜重、株高、根长、根数及叶绿素含量、光合速率、蒸腾速率,筛选适合春兰生长的最佳溶液。结果表明:A溶液的T2浓度最适合春兰生长。     

外源NO对渗透胁迫下黄瓜种子萌发、幼苗生长和生理特性的影响

【目的】探究外源NO对渗透胁迫下黄瓜（Cucumis sativus L.）种子萌发、幼苗生长和生理特性的作用。【方法】在25% PEG-6000胁迫下，研究0.1和0.5 mmol•L-1SNP（硝普钠）对黄瓜种子萌发、幼苗生长、叶片氧化损伤和保护酶活性的影响。【结果】0.1 mmol•L-1 SNP处理能显著缓解25%PEG-6000的胁迫伤害，使黄瓜种子萌发率提高0.24倍，发芽指数提高0.86倍，活力指数提高3.01倍；幼苗株高、根长和干重分别提高1.15，2.17和1.16倍；叶片Pro含量提高50.99%，SOD，CAT，POD和APX活性分别提高42.39%，66.58%，79.03%和116.39%，MDA含量降低80.50%。与0.1 mmol•L-1 SNP处理相比，0.5 mmol•L-1 SNP处理促进黄瓜种子萌发和幼苗生长，缓解叶片氧化损伤和提高保护酶活性的作用明显或显著降低。【结论】0.1 mmol•L-1 SNP能显著促进渗透胁迫下黄瓜种子萌发和幼苗生长，明显缓解叶片氧化损伤，显著提高SOD等保护酶活性；0.5 mmol•L-1 SNP的有效作用减弱，甚至抑制SOD活性。     

长吻(鱼危)与大鰭鳠的含肉率及鱼肉营养成分的比较研究

本试验定量测定了长吻(鱼危)、大鳍鳠的含肉率及鱼肉的主要营养成分;分析了肌肉水解液中氨基酸及肌肉游离氨基酸的含量;比较、评价了两种鱼的营养价值。结果表明,长吻(鱼危)优于大鳍鳠。     

基因活化剂对紫肉甘薯根系活力的影响

基因活化剂使用浓度(A)设3个水平:375×(A1)、750×(A2)和1 500×(A3)稀释液,处理时间(B)设3个水平:浸渍苕秧基部0.5 h(B1)、1 h(B2)和2 h(B3),处理后培养在改良Hoagland培养基中,12 d后测定根系α-萘胺氧化速率、NO-3和K+吸收速率.结果表明:A1、A2和A3的α-萘胺氧化速率分别比对照(98.46μg/g·h)提高2.99,5.92和2.37倍;NO-3吸收速率分别比对照(0.23 mg/株·h)提高0.51,1.14和0.66倍;K+吸收速率分别比对照(0.12 mg/株·h)提高1.73,2.73和1.16倍.与对照相比,B1、B2和B3的α-萘腠氧化速率分别提高5.50,3.29和2.49倍;NO-3吸收速率分别提高0.60,1.09和0.63倍;K+吸收速率分别提高1.57,2.66和1.40倍.因素A、B与对照差异达极显著水平,不同水平间差异极显著(p<0.01).A2 B2是最佳水平组合,即用750倍的基因活化剂浸渍苕秧基部1 h,可显著提高紫肉甘薯的根系活力,比对照α-萘胺氧化速率、NO-3和K+吸收速率分别提高5.75,1.51,3.52倍.