三角帆蚌人工简易繁殖法

我站根据毛主席“科学实验必须和生产实践相结合”的指示,组织技术人员深入农村和贫下中农一起,参加批林批孔、参加群众性的科学实践,对三角帆蚌采用了各种不同的培育方法,进行试验摸索,取得了可喜成果。在人工繁殖三角帆蚌的实验中,我们共采用六种方法,其中以网箱培育法最好。现已获蚌三万多只。它的优点是成本低、管理简单、化费劳力少、幼蚌成活率高、成长快。现将具体方法介绍如下：     

淹没式蚌池育蚌试验

三角帆蚌是我国特产的优良育珠蚌种,为探索快速育蚌的新途径,我们于1986—1988年,在湖州市区乔溪乡红旗水库上游的消落区,开展了淹没式蚌池育蚌试验,现将情况报告如下:一、试验情况1.蚌池结构与尺寸。淹没式蚌池分别建于红旗水库库尾西北侧的南坞村施家桥下和东北侧石郎鸡场下游入库侧,总面积6000m~2,水位变幅2—3m,试验池的尽寸为60m×25m×1.5m 和70m×20m×0.5m。为充分利用库区上游丰富的砂石资源并降低生产成本,蚌池均用新型、价廉的埋石     

蚌病的预防

河蚌育珠，是农民的一项传统副业，但蚌病严重影响珍珠产量，减少收入，甚至造成全军覆没，挫伤群众的养蚌积极性。育珠蚌的发病原因比较复杂，如手术操作中消毒不严、蚌体瘦弱抗病力差、各种病原体的侵袭，这些都是致病的因素。蚌被吊养在袋内，肌体包被在双壳中，病蚌不易被发现，一旦得病，将很难控制，回此，蚌病应该以防为主，治疗为辅，根据笔者多年的生产经验，有如下体会：1．自繁自育，严禁外购小蚌。手术蚌，可以自己繁育、培养，尽可能不购或少购外地幼蚌，杠绝病源侵入。在选择亲蚌时，还应尽量避免近亲繁殖，优生优育，增强后…     

三角帆蚌与池蝶蚌育珠性能比较

三角帆蚌,隶属于瓣鳃纲,真瓣鳃目,蚌科,帆蚌属,是中国特有的优质淡水育珠蚌。三角帆所产的珍珠产量佳,珠质细腻、光滑、色泽鲜艳、形状较圆,但珍珠生长比较缓慢。池蝶蚌与三角帆蚌同属帆蚌属(日本称为池蝶蚌属),是中国大陆近年来从日本、台湾引进的优良珠贝类。与三角帆蚌相比,池蝶蚌具有壳、珍珠层、外套膜较厚,珍珠质分泌能力强等优点。     

三角帆蚌蚌瘟病的防治技术

三角帆蚌蚌瘟病的防治技术潘炳炎，文仲芬（淡水渔业研究中心无锡２１４０８１）三角帆蚌是我国淡水人工育珠中的优良品种，所产珍珠具有光泽好、珠粒圆的特点，但作为育珠用的三角帆蚌，在生产过程中因病害而大批死亡，给育珠生产造成重大损失，特别是三角帆蚌的蚌瘟病，...     

蚌病的综合防治技术

育珠蚌发病原因比较复杂，如蚌种近亲繁殖，养殖性能下降；水面重复养殖多年，育珠所需微量元素减少，抗病育珠能力减弱；水环境恶化，水源污染，各种病原体的侵袭；手术操作中消毒不严重、蚌体瘦弱、抗病力差等，这些都是导致蚌病频繁发生的直接原因。珠蚌吊养在水中，肌体包被在双壳中，因而蚌病不易发现，一旦患病，很难控制和治疗。因此，蚌病应该以防为主，治疗为辅，根据笔者多年的生产经验，有如下体会。1、自繁自育，严禁外购小蚌。手术蚌，可以自己繁育培养，尽可能不购或少购外地幼蚌，切断病源菌的传播途径。目繁自育可有目的地…     

三角帆蚌蚌瘟病的防治技术

三角帆蚌是我国淡水人工育珠中的优良品种,所产珍珠具有光泽好、珠粒圆的特点,但作为育珠用的三角帆蚌,在生产过程中因病害而大批死亡,给育珠生产造成重大损失,特别是三角帆蚌的蚌瘟病,仅今年江浙沪一带都时有发生,尤其是浙江金华,仅在5～6两个月,一场罕见的蚌瘟袭击了该市,估计造成直接经济损失已达3亿元之巨。群众称之谓三角帆蚌瘟病,其实是     

池塘底养三角帆蚌小蚌的技术

目前,一些养蚌育珠单位和个人为节约生产成本,提高经济效益,多采用“池底养小蚌,水面育珠,水中养鱼”的养殖方法。但往往由于经验不足,造成底养三角小蚌生长速度不快,养殖效果差。1 小蚌生长缓慢的原因1.1 池塘底质不好 三角帆蚌一般生活在江河、湖沼、池塘水底,利用斧足挖掘泥沙,营底栖生活,但在小蚌阶段(壳长2～3厘米),其生活能力较差,运动能力不强,这时如将小蚌撒播在淤泥太厚、粘性土壤或底质坚硬的池     

调控生态环境 快速培育三角帆蚌幼蚌

三角帆蚌(Hyriopsis cumingii)是目前我国珍珠养殖业中,产珠质量最佳、应用最广的淡水蚌。由于蚌摄食的被动性,外周环境条件对其生长就有着重要影响,因而,欲促使三角帆蚌快速生长,必须从调控生态环境入手。现将我们多年来进行科学研究和养殖实践的体会总结如下。     

三角帆蚌蚌瘟病的研究现状

三角帆蚌(Hyriopsis cumingii)为中国特有种。在河北、山东、安徽、湖南、湖北、江苏、浙江、江西等省均有分布,主要集中在长江中下游的湖泊及其周围的水域。贝壳大而扁平、背后缘向上扩展形成一大三角帆形翼,外行呈三角形。三角帆蚌的分类地位属于软体动物门(Mollusca)双壳纲(Bivalvia)古异齿亚纲(Palaeoheterodonta)蚌总科(Unionacea)蚌目(Unionidae)珠蚌科(Unionidae)帆蚌属(Hyriopsis)三角帆蚌(Hyriopsis cumingii)。     

三角帆蚌瘟病的生态学防治

采用石灰超细微颗粒悬浮法为主控制池塘生态环境，中草药针剂注射为辅的方法，成功的控制了由嵌砂样病毒（Ａｒｅｎａｖｉｒｕｓ）引起的暴发性三角帆蚌瘟病。７０００只育珠蚌两周年成活率９７３％，药物费用仅占产珠成本的二十分之一。结果表明，提高生态环境的ｐＨ并增加其钙浓度可以抑制蚌瘟病。后来应用此法控制鱼、贝类病毒病，推广面积达１２００公倾。     

鳖“白板病”致病细菌的研究

对福建省福清、莆田和厦门等地区养殖鳖的“白板病”病原菌进行了分离培养、菌种鉴定、人工感染及药敏试验等研究，得知该病的致病菌主要为嗜水气单胞菌（Ａｅｒｏｍｏｎａｓ ｈｙｄｒｏｐｈｉｌａ）同时还迟缓爱德华氏菌（Ｅｄｗａｒｄｓｉｅｌｌａ ｔａｒｄａ）和普通变形杆菌（Ｐｒｏｔｅｕｓ ｖｕｌｇａｒｉｓ）。     

基于栖息地模拟法的中华鲟自然繁殖适合生态流量分析

以长江中华鲟作为目标物种,通过中华鲟自然繁殖期间产卵江段的的栖息地调查,确定了中华鲟的偏好水深、偏好流速及偏好底质。以河道内流量增量法(IFIM)为基础,采用二维水力学模型结合鱼类栖息地模型对中华鲟产卵场的栖息地条件进行了分析,计算了中华鲟自然繁殖期间流量与栖息地加权可利用面积的关系。结果表明,流量在13000～15000m3/s时,栖息地加权可利用面积达到最大,约2.1km2。     

兽药替米考星及其临床应用

替米考星是一种动物专用的新型大环内酯类抗生素,临床主要应用于牛、猪、鸡、绵羊、山羊、兔等动物感染性疾病,特别是畜禽呼吸道疾病并取得显著疗效。该药具有抗菌活性强、药代动力学特征优良、用量少、毒性小等特点。临床应用表明:替米考星是一种安全有效的新型兽药,具有广阔的应用前景。     

沙市地区暴发性传染病病原研究

1991年6—9月,从湖北省沙市市及江陵县患暴发性传染病的鲢鱼、鳙鱼、团头鲂、白鲫和鲤鱼体内分离到10多株病原菌;这类细菌能够使多种淡水鱼致病,20℃—28℃时,LD_(50)为10~(4.2)—10~(5.0),能够产生溶血毒素和细胞毒素。经鉴定嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)亦是沙市地区暴发性传染病病原之一。     

A viral aetiology for the annual spring epizootics of Atlantic menhaden Brevoortia tyrannus (Latrobe) in Chesapeake Bay

Abstract. Virus was isolated from the brain and pancreatic tissues of Atlantic menhaden with 'spinning' disease. The biological, physical and chemical properties of the isolate were similar to those of infectious pancreatic necrosis virus. Inoculation of the virus into healthy menhaden resulted in the characteristic signs and mortality associated with the natural disease.     

家兔魏氏梭菌的分离与半套式PCR鉴定

魏氏梭菌病是危害养兔业的重要疾病。某养兔场发生一种以急性黑色水样腹泻或排带血的胶冻样粪便、盲肠出血、胃粘膜出血为主要特征的传染病,通过病原菌的分离培养、形态染色观察、生化鉴定和半套式PCR反应,分离出一株魏氏梭菌。通过药物敏感实验筛选出了敏感药物。实验结果为该病的正确防控措施的提出提供了参考。     

Development of a multiplex RT-PCR assay for simultaneous detection of the major viruses that affect rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)

The major viral diseases that affect rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) are viral haemorrhagic septicaemia, infectious haematopoietic necrosis, infectious pancreatic necrosis and sleeping disease. In the presented study, we developed a multiplex RT-PCR (mRT-PCR) assay for the simultaneous detection of these four rainbow trout viruses in a single assay. The choice of primers was carried out based on the expected size of the fragments, the temperature and time required for the amplification, and the specificity for the target sequence. Firstly, the method was optimised using reference strains of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV), infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV), infectious pancreatic necrosis virus (IPNV) and sleeping disease virus (SDV) cultivated with permissive cell culture lines; subsequently, the method was used for the identification of these viral infections in rainbow trout samples. Twenty-two samples of rainbow trout, clinically suspected of having viruses, were analysed by the developed method to detect the presence of the four viruses, by directly analysing the animal tissues. The mRT-PCR method was able to efficiently detect the viral RNA in infected cell culture supernatants and in tissue samples, highlighting the presence of single infections as well as co-infections in rainbow trout samples. VHSV/SDV and IHNV/SDV co-infections were demonstrated for the first time in rainbow trout. The mRT-PCR method was revealed to be an accurate and fast method to support traditional diagnostic techniques in the diagnosis of major viral diseases of rainbow trout.     

A review of infectious gill disease in marine salmonid fish

Infectious gill diseases of marine salmonid fish present a significant challenge in salmon-farming regions. Infectious syndromes or disease conditions affecting marine-farmed salmonids include amoebic gill disease (AGD), proliferative gill inflammation (PGI) and tenacibaculosis. Pathogens involved include parasites, such as Neoparamoeba perurans, bacteria, such as Piscichlamydia salmonis and Tenacibaculum maritimum, and viruses, such as the Atlantic salmon paramyxovirus (ASPV). The present level of understanding of these is reviewed with regard to risk factors, potential impacting factors, methods of best practice to mitigate infectious gill disease, as well as knowledge gaps and avenues for future research.