卤虫携带白斑综合征病毒的研究

卤虫是是，蟹苗种培育的关键动物性饵料，查清其能否携带白斑综合征病毒，对培育健康苗种至关重要。2002年7月至10月，自盐田中取野生卤虫，经暂养后选20尾抱卵雌虫，每尾置1个烧杯中，投喂单胞藻，产卵后取出亲体；20d后，每个烧杯中取5尾子一代个体，利用巢式体外DNA扩增技术对亲体和子一代成体进行WSSV病毒检测，检测结果显示：卤虫中可扩增出特异性的，与引物设计吻合的DNA片段；DNA测序分析表明，扩增片段的DNA序列与白斑综合征病毒序列一致；野生卤虫携带白斑综合征病毒的阳性率为58%，实验条件下野生卤虫后代的阳性率为43%，同一家系中，亲代与子代携带病毒的情况不完全一致，不能确实白斑综合征病毒可否通过繁殖，在卤虫世代间进行垂直传播，研究结果表明：卤虫很可能是白斑综合征病毒的携带者，苗种培育和养殖期间投喂卤虫可能造成虾，蟹感染白斑综合征病毒，卤虫检疫是培育健康苗种的关键措施。     

二温式PCR检测对虾传染性皮下和造血器官坏死病毒的研究

根据对虾传染性皮下和造血器官坏死病毒(IHHNV)基因序列,设计了1对可以扩增356 bp IHH-NV某段基因序列的特异性引物,优化建立了能快速检测IHHNV的二温式PCR。特异性试验和敏感性试验结果表明,该技术只对IHHNV DNA模板进行扩增,得到356 bp的DNA扩增片段,而对SPF南美白对虾组织DNA和其它对虾病原DNA/RNA的扩增结果为阴性;该技术最低能检测到10 pg的IHHNV感染对虾组织样品总DNA。应用该技术对400份对虾临床样品进行检测,结果有96份样品呈现阳性,表明该病在我国南方的养殖对虾中广泛存在,二温式PCR技术可以直接用于该病的临床快速检测和流行病学调查。     

对虾WSSV和IHHNV多重PCR检测试剂盒的研究与应用

在对虾白斑综合征病毒(WSSV)和传染性皮下和造血器官坏死病毒(IHHNV)二温式PCR检测技术前期研究的基础上,将这2种病原的特异性引物与PCR基础反应液一起组装成快速检测试剂盒。通过对试剂盒敏感性、稳定性和保存期等技术指标的测定以及对临床样品的检测试验,该试剂盒对同一样品中的WSSV和IHHNV DNA模板均能特异性地扩增出2条与实验设计相符的593 bp(WSSV)和356 bp(IHHNV)的DNA片段,而对其它对虾病原的扩增结果均为阴性;该试剂盒最低能检测到102pg的WSSV DNA和10 pg的IHHNV DNA。对WSSV和IHHNV DNA的检出量分别为102~103pg和10~102pg。     

白斑综合征病毒和桃拉综合征病毒对凡纳滨对虾的混合感染

2003年10月青岛胶州市对虾养殖场养殖的凡纳滨对虾出现大规模死亡，死亡率在90％以上，典型症状为肝胰腺发红、通过镜检排除寄生虫和细菌感染后，利用免疫荧光抗体技术(IFAT)和PCR方法从病虾鳃中检出白斑综合征病毒(WSSV)，同时利用RT—PCR方法住同一批病虾鳃中检出桃拉综合征病毒(TSV)。结合发病症状，可以认定两种病毒的混合感染造成了凡纳滨对虾的大规模死亡。     

卤虫在WSSV病毒病传播中的媒介作用

2003年8月对卤虫进行投喂(浸泡)感染，并进行中国明对虾投喂实验。各组对虾阳性感染率的单因素方差分析比较结果表明，卤虫可以携带有活性的WSSV病毒粒子，并可通过摄食导致对虾间接地携带病毒，但病毒感染能力有限。卤虫病理切片观察结果显示，攻毒后卤虫细胞核没有显著深染及核肿大现象，但无论是横切还是纵切均显示有上皮脱落、部分组织结构松散、细胞结构不完整现象。本试验确定卤虫成体可以携带WSSV并通过投喂感染对虾，使其潜在携带病毒，仔虾阶段投喂成体卤虫应经过严格检疫，制作含有经过检疫卤虫的微囊饵料作为卤虫及其他鲜活饵料的替代品或许是有效的防病措施。     

聚合酶链反应（PCR）检测养殖对虾的白斑症病毒（WSSV）感染

对虾WSSV病是亚洲对虾养殖业中的一个棘手问题。本研究采用Kimura引物 ,用PCR技术对不同生长期的中国对虾 (Penaeuschinensis)进行了WSSV的检测 ,同时也检测了对虾发病时养殖池中多见的野生厚蟹 (Helicesp .)和矛尾刺虎鱼 (Acanthogobiushasta)。检测结果表明 :分别在检测的 5尾亲虾中的 1尾 ,6尾仔虾中的 1尾 ,5尾稚虾中的 3尾及所检测的 5尾病虾和 2只厚蟹中获得到 982bp的PCR扩增产物 ,说明为WSSV感染阳性。在检测的 2尾矛尾刺虎鱼中均未获得PCR扩增产物 ,说明为WSSV感染阴性。在亲虾、虾苗以及虾池内的野生厚蟹中检测到WSSV感染的阳性结果表明 :WSSV感染的亲虾有可能是病毒的储主 ,WSSV感染的野生厚蟹有可能是病毒中间宿主或病毒的携带者 ,它们在对虾WSSV病的感染、传播中起了重要的作用     

现代生物技术检测对虾病毒病在商业化应用中的限制

对虾病毒性疾病有多种，如白斑病毒、桃拉病毒、黄头病毒等。多年来，科研人员对病毒病的诊断方法进行了大量的研究，现代生物检测技术得到较多应用，如酶联免疫吸附（ELISA）、聚合酶链式反应（PCR）、核酸探针斑点杂交等，发表了较多提取病毒、改进病毒检测方法等文章。检测方法越来越简易、灵敏，并开发有WSSV、TSV等病毒检测试剂盒。利用现代生物检测技术诊断对虾病毒病对监测养殖生产中的疾病流行趋势有一定的作用，但各种检测方法大都局限于国家机构的实验室进行，难以大规模商业化应用。是什么原因使先进的检测技术无法服务于养殖生产？现结合生产以及科研实践进行多方面探讨，供参考。     

对虾传染性皮下及造血组织坏死病毒(IHHNV) PCR检测方法的建立

对虾传染性皮下及造血组织坏死病毒(IHHNV)病是国际兽疫局(OIE)划定的甲壳类其他重要疾病之一,它分布较广,危害严重,对世界对虾养殖业发展影响重大.本文根据Genbank登录的IHHNV基因序列(AF218266),设计了1对特异性引物,从纯化的IHHNV DNA和感染IHHNV凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)组织DNA中成功地扩增出产物大小为703bp的DNA片段,该对引物对IHHNV DNA的检测灵敏度为19.85fg(8.83×103病毒拷贝),与健康对虾组织DNA、对虾白斑综合征病毒(WSSV) DNA及对虾肝胰腺细小病毒(HPV) DNA无交叉反应.本方法可快速、灵敏、特异地检测出对虾感染和携带IHHNV状况,为对虾健康养殖、无特定病原(SPF)种群选育及流行病调查提供了有效的检测手段.     

一株鲤春病毒血症病毒的初步分离及鉴定

为了检测上海市某鲤鱼养殖场的疑似患病鲤鱼是否携带鲤春病毒血症病毒(SVCV),采用鲤鱼表皮瘤细胞系(EPC)进行病毒分离和分子PCR方法对SVCV的糖蛋白基因保守区域进行扩增。试验结果:被病毒感染的EPC细胞呈现细胞圆缩、颗粒增多、大量脱落等病变特征,且该株病毒毒力较强,其病毒滴度TCID50/0.1 mL为105.76。分子方法扩增出714 bp和606 bp的SVCV的保守片段。试验采用细胞培养技术和分子PCR方法检测样品是否携带病毒性病原,建立了一种较为简捷高效的检测方法。该方法适合在短时间内完成大量样品的病原学诊断及检疫任务,具有良好的应用前景。     

多重RT-PCR体系检测4种虾病毒的方法

根据多重RT-PCR的技术原理,利用对虾传染性表皮与造血组织坏死症病毒、白斑综合征病毒、黄头病毒和桃拉综合征病毒的基因序列分别设计了4对特异引物,建立多重RT-PCR体系用于虾4种病毒的检测。多重RT-PCR体系能特异地扩增出IHHNV、WSSV、YHV和TSV的目的片段:TSV特异性扩增片段508 bp,WSSV 特异性扩增片段435 bp,IHHNV 特异性扩增片段301 bp 和YHV。特异性扩增片段614 bp。结果表明,多重PCR虾病毒检测系统具有较高的特异性和敏感性,并对其它对虾病原呈阴性。IHHNV、TSV、WSSV和YHV模板在多重PCR虾病毒检测体系中的检测下限分别为0.1,1,0.02和0.2 pg。病毒感染病料检测试验中,该检测体系的检测结果与单纯PCR的检测结果呈现出较好的吻合度。     

多重PCR检测对虾白斑综合症病毒和传染性皮下组织坏死病毒

采用对虾白斑综合症病毒和传染性皮下组织坏死病毒的特异引物,在一个PCR反应中同时扩增到大小分别为271 bp和356 bp的病毒特异片段,多重PCR条件优化后可从最少100 fg级病毒DNA模板中定性检测出此两种病毒。     

江苏地区对虾3种病毒病的流行病学调查及5株IHHNV的编码区基因序列分析

对虾白斑综合征病毒(WSSV)、桃拉综合征病毒(TSV)、传染性皮下及造血组织坏死病毒(IHHNV)是威胁对虾养殖的重要病毒。为了调查这3种病在江苏境内的流行情况,根据世界动物卫生组织(OIE)推荐的《水生动物疾病诊断手册》的PCR检测法对2015年5月—2016年5月采集的1436尾对虾样品进行3种疾病的流行病学调查。结果显示WSSV阳性率为17.20%,TSV阳性率为0%,IHHNV阳性率为39.48%。对江苏不同地区分离出的5株IHHNV进行基因序列分析,数据显示这5个地区的毒株均属于Ⅰ型感染株,与韩国株的进化关系较为接近。本研究通过调查以上3种病毒病在江苏境内的流行情况,并进行序列分析,发现江苏不同地区的凡纳滨对虾IHHNV感染均为Ⅰ型,研究结果对养殖虾的疾病防控有重要参考价值。     

Multiple infections caused by white spot syndrome virus and Enterocytozoon hepatopenaei in pond‐reared Penaeus vannamei in India and multiplex PCR for their simultaneous detection

White leg shrimp, Penaeus vannamei, were collected on a monthly basis from grow‐out ponds located at Tamil Nadu and Andhra Pradesh states along the east coast of India for screening of viral and other pathogens. Totally 240 shrimp samples randomly collected from 92 farms were screened for white spot syndrome virus (WSSV), infectious hypodermal and haematopoietic necrosis virus (IHHNV), infectious myonecrosis virus (IMNV) and Enterocytozoon hepatopenaei (EHP). The number of shrimp collected from shrimp farms ranged from 6 to 20 based on the body weight of the shrimp. All the shrimp collected from one farm were pooled together for screening for pathogens by PCR assay. Among the samples screened, 28 samples were WSSV‐positive, one positive for IHHNV and 30 samples positive for EHP. Among the positive samples, four samples were found to be positive for both WSSV and EHP, which indicated that the shrimp had multiple infections with WSSV and EHP. This is the first report on the occurrence of multiple infections caused by WSSV and EHP. Multiplex PCR (m‐PCR) protocol was standardized to detect both pathogens simultaneously in single reaction instead of carrying out separate PCR for both pathogens. Using m‐PCR assay, naturally infected shrimp samples collected from field showed two prominent bands of 615 and 510 bp for WSSV and EHP, respectively.     

双重PCR同时检测对虾白斑综合征病毒(WSSV)和传染性皮下及造血器官坏死病毒(IHHNV)

根据Genbank中对虾白斑病由白斑综合征病毒（WSSV）和传染性皮下及造血器官坏死病毒（IHHNV）的基因序列，设计了两对能分别检测WSSV和IHHNV保守片段基因的特异性引物，而且这两对引物在同一反应体系中可以同时对WSSV和IHHNV的DNA模板进行多重PCR扩增，得到大小分别为110bp（WSSV）和356bp（IHHNV）的扩增条带。对影响PCR反应的主要因素Mg“浓度和退火温度进行了优化，证明当Mg^2＋浓度为2．0～4．0mmd，退火温度为57～59℃时可获得最佳的扩增和检测效果。特异性试验结果表明，这两对引物检测WSSV和IHHNV具有很好的特异性，对其它对虾常见病原的PCR扩增结果均为阴性。敏感性测定结果表明，该反应体系最低能检测100pg的WSSV和IHHNV的DNA模板。临床检测表明，所建立的双重PCR方法可以适用于WSSV和IHHNV的同时检测和鉴别。     

对虾6种病毒多重PCR检测方法的建立

本研究针对养殖对虾6种病毒,包括白斑综合征病毒(WSSV)、传染性皮下及造血组织坏死病毒(IHHNV)、肝胰腺细小病毒(HPV)、桃拉综合征病毒(TSV)、对虾杆状病毒(BP)和传染性肌肉坏死病毒(IMNV),选择各自的基因分别设计特异性引物和探针,首先进行了单一病毒的PCR验证,在此基础上建立了同时特异性检测6种对虾病毒的多重PCR检测体系。对反应条件进行优化并进行特异性和灵敏度的验证。50μl反应体系,Mg2+的最佳浓度为5mmol/L,ExTaq酶最佳用量为3.75U,反应程序中最佳退火温度为55.5℃。6种病毒之间以及与对虾基因组都存在很好的特异性。最终经试验验证,该系统的检测灵敏度对WSSV可达104拷贝,IHHNV可达102拷贝,HPV可达104拷贝,TSV可达103拷贝,BP可达105拷贝,IMNV可达105拷贝。虽然该多重PCR方法灵敏度不如单一的PCR检测高,但是通过实际样品检测验证了该方法省时、消耗较少,又不失准确性,在实际应用中具有可靠性和应用价值。     

常规PCR、实时定量PCR检测传染性皮下及造血器官坏死病毒的效果分析

对虾传染性皮下及造血器官坏死病毒(IHHNV)可感染世界各地养殖对虾,给对虾养殖业造成严重经济损失。本实验首次采用实时定量PCR法对广西地区的84份凡纳滨对虾样品进行检测,同时以常规PCR检测作对照。实时定量PCR检测阳性率为79·8%,常规PCR检测阳性率为40·5%,表明广西地区养殖的凡纳滨对虾IHHNV的感染率较高。将二者检测均呈阳性的30份样品扩增产物进行序列分析测序,测序结果通过DNA STAR软件包进行分析,并通过NCBI Blast与GenBank中的序列进行比对。结果证明,测定的是IHHNV序列。30份样品的IHHNV序列很保守,可以分为4种类型,仅有两个碱基的位置发生变异。实时定量PCR检测IHHNV,快速、灵敏、准确,特异性好,可以作为检测对虾感染病毒的有效方法。     

Prevalence of white spot syndrome virus infection detected by one-step and nested PCR in selected tiger shrimp (<Emphasis Type="Italic">Penaeus monodon</Emphasis>) hatcheries

White spot syndrome (WSS) is considered as a great threat to commercial farming of the tiger shrimp (Penaeus monodon). The causal agent of WSS is a DNA virus called white spot syndrome virus (WSSV). The prevalence of this dreadful virus infection has been studied in five randomly selected hatcheries located in the Cox’s Bazar district of Bangladesh. Both one-step and nested polymerase chain reaction (PCR) involving two pairs of primers, namely, 146F1/146R1 and 146F2/146R2, amplifying the 1447 bp and 941 bp fragments, respectively, were conducted to detect the WSSV. Out of 60 randomly collected shrimps, 12 (20%) were found to be positive by one-step PCR, while 18 (30%) were found to be positive by nested PCR. The nested PCR was found to be much more sensitive than the one-step PCR. The shrimp specimens showing clinical signs of WSS were positive for WSSV by both one-step and nested PCR. Some of the apparently healthy samples were also found to be positive for WSSV by nested PCR. Among the two primer-pairs, the inner pair amplifying the 941 bp fragment was more sensitive than the outer primer pair amplifying the 1447 bp fragment when used in one-step PCR.