陈山红心杉优良无性系组培快速繁殖技术研究

以陈山红心杉20个红心比例达70%以上的优良无性系基部萌条为外植体,建立了组培高效繁育体系。优化条件筛选结果表明:MS BA2.0mg/L(单位下同) NAA0.5为最佳诱导培养基;1/2MS BA1.5 NAA0.5 适量有机物为最佳增殖培养基,苗木叶色嫩绿,生长正常,增殖系数可达4.5;1/2MS NAA0.2 IBA0.5为最佳生根培养基,生根率达89.3%。     

辣木组培育苗技术研究总结

以当年生辣木实生苗顶芽、幼嫩侧芽为繁殖材料,在培养基改良MS BA0.5-2.0 NAA0.05-0.3 蔗糖20g/L 卡拉胶9g/L上诱导获得丛芽,在培养基改良MS BA0.3-1.0 NAA0.1-0.2 蔗糖20g/L 卡胶9g/L上继代增殖,增殖倍数3.0以上,生根诱导在1/3改良MS NAA0.2-0.5 IBA0.2-0.5 蔗糖10-20g/L 卡拉胶10g/L的培养基上获得健壮的生根苗,生根诱导率90%以上,移栽苗圃获得成功。     

月季快速繁殖技术研究

研究不同植物生长调节剂及质量浓度对带芽茎段分化、继代和生根的影响.结果表明:月季芽的分化培养基为M S+BA 1.0 m g.L-1+NAA 0.1 m g.L-1,不定芽的诱导率为80%;在M S+BA 1.0 m g.L-1培养基上继代增值的效果较好;NAA的生根效果优于IBA,以1/2M S+0.5 m g.L-1NAA最佳.     

溪荪组织培养技术的研究

以溪荪为试验材料,研究了消毒时间、外植体种类对溪荪组织培养的影响,筛选出了适宜的初代培养基、增殖培养基和生根培养基。试验结果表明:适宜的外植体为带芽根状茎,以1g/L的HgCl2消毒8min效果最好。适宜的初代培养基为MS+BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L,诱导成苗率达88.57%。适宜的增殖培养基为MS+BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L,增殖系数为4.72。适宜的生根培养基为MS+BA0.1mg/L+NAA0.5mg/L,平均每株生根数量为8.9条,平均根长为2.5cm,平均根粗为1.0mm。     

外源激素对美洲冬青组织培养的影响

以美洲冬青Illex verticillata带腋芽的茎段为外植体,通过附加一定种类和质量浓度的外源激素,找到美洲冬青诱导、增殖和壮苗以及生根的理想培养基,建立美洲冬青组织培养再生体系。结果表明,美洲冬青较理想的各种培养基为:①腋芽诱导:MS+BA0.5 mg.L-1+IBA 0.1 mg.L-1,其诱导率为95.5%;②丛芽增殖:MS+CPPU(氯吡笨脲)1.0 mg.L-1+NAA 0.5 mg.L-1,增殖系数为11;③壮苗:MS+BA2.0 mg.L-1+NAA 0.2 mg.L-1;④生根:1/2MS+IBA2.0 mg.L-1,生根率达到99.9%,根长3.4 cm。     

非洲菊F1的组织培养

以非洲菊南燕F1种子无菌萌发的种子苗作外植体,在含不同植物激素的培养基上进行丛生芽的诱导、芽的继代增殖、芽生根与移栽,以快速获得再生植株.结果表明:丛生芽诱导培养基以MS+BA1.5mg·L-1+IBA0.2mg·L-1较好,诱导系数达到7;增殖培养基以MS+BA0.5mg·L-1+NAA0.1mg·L-1较好,增殖系数高达10,且增殖芽生长好;生根培养基以1/2MS+IBA0.2mg·L-1最佳,生根率达100%,平均生根数量多,幼苗生长势旺.     

康乃馨脱除斑驳病毒组织培养技术研究

作者对康乃馨进行脱除斑驳病毒培育无毒苗的技术研究。试验表明:用0.3mm茎尖接种,在MS+BA0.7mg/L+NAA0.1～0.2mg/L培养基上愈伤组织诱导率为90.0%;在MS+BA0.8mg/L+NAA0.2mg/L培养基上愈伤组织分化出芽率为74.0%,平均每块愈伤组织有芽5.9个。在MS+BA2.0mg/L+NAA0.3mg/L和MS+BA2.0mg/L+NAA0.5mg/L培养基上增殖倍数6.5～7.4;在1/2MS+NAA0.01mg/L+IBA0.05mg/L上诱导生根率为90.0%;降低培养温度、增加光照强度及培养基中加入20万单位青霉素可减轻玻璃苗现象。经汁液传染试验检测,组培苗脱毒率为65.0%。     

南洋楹组培快繁技术优化研究

以南洋楹优树种子无菌苗单株作为初始外植体,通过均匀设计和正交设计试验筛选培养基配方,并对诱导增殖流程、培养条件、炼苗等技术环节进行了优化研究,建立南洋楹无性系规模化组培快繁技术。结果表明:南洋楹外植体在诱导培养基MS+6BA 0.5 mg/L诱导分化2周期后,转入增殖培养基MS+6BA 0.2 mg/L+NAA0.02 mg/L+蔗糖30 g/L,采用自然光源培养4周期,可显著抑制玻璃化现象,增殖倍数达4.1;生根培养基为1/2MS+NAA 0.01 mg/L+IBA 0.2 mg/L+蔗糖20 g/L,生根率72.3%;将生根与炼苗过程结合进行可增强植株抗性,移栽成活率提高至92.5%。     

''''米邦塔''''仙人掌的快速繁殖

米邦塔仙人掌的营养价值很高,可加工成多种保健品或作为蔬菜、水果直接食用。为达到快速繁殖的目的,对食用仙人掌‘米邦塔'的离体快繁进行研究,结果表明:幼茎片在M S KT 3 m g.L-1 6-BA 2 m g.L-1 NAA 0.2 m g.L-1 IAA0.15 m g.L-1中的平均不定芽数为3.44个;继代增殖培养基为M S 2,4-D 0.5 m g.L-1 NAA 0.1 m g.L-1 BA 0.5 m g.L-1 KT 2 m g.L-1,接种30 d后,平均增殖系数为11.64;生根壮苗培养基为1/2 M S IBA 1.5 m g.L-1,生根率100%,每株平均根数9.63条,平均茎长3.99 cm;试管苗生根35 d移栽,成活率最高可达100%。     

闽楠组培快繁技术研究

用20年生闽楠基部萌芽枝条为外植体,从接种时期、取材部位、愈伤组织诱导、增殖和分化、生根培养方面,探讨闽楠的离体快繁技术。结果表明:在春季接种,诱导率高而褐化率低,分别为95.8%和6.5%;茎段诱导率89%,愈伤组织呈白色,易分化,为最优部位;BA与NAA对愈伤组织诱导影响最大,最佳诱导培养基为:MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.5mg/L,诱导率为100%。最优分化和增殖(系数4.4)培养基是BA2.0+NAA0.1mg/L,用1/2MS+IBA0.5mg/L的培养基,生根率可达98%。     

东北红豆杉的组织培养技术研究

为了得到珍贵药用植物东北红豆杉的组织培养快繁技术，以MS基本培养基为基础，加入不同质量浓度的6-BA、KT、IBA、NAA等植物激素对东北红豆杉的茎尖和休眠枝进行组织培养。结果表明：东北红豆杉茎尖的芽分化与生长对不同质量浓度的激素不太敏感。IBA和NAA对茎尖分化无明显差异，6-BA较有利于芽的生长分化，而KT有利于产生愈伤组织。     

尾巨桉M8无性系增殖培养技术研究

选用已经通过无性系测定的优良无性系单株尾巨桉（Eucalyptus urophylla × E. grandis） M8， 以其半木质化嫩枝为外植体，采用组培繁殖中遗传稳定性高的丛芽发生途径，探讨基本培养基、6-BA、 IBA、蔗糖和 pH 这 5 个因子分别对增殖效果的影响。结果表明：（1）采用 MS + 6-BA 0.2 mg/L + 蔗糖 30 g/L + 卡拉胶 6.8 g/L，pH 为 5.8 的培养基进行尾巨桉 M8 外植体腋芽的诱导时，10 ~ 15 d 为出芽高峰期， 平均污染率为 15.3%，平均诱导率为 77.9%；（2）适宜尾巨桉 M8 增殖的最佳培养基为改良 MS 培养基、 6-BA 浓度为 0.2 ~ 0.5 mg/L、IBA 浓度为 0.05 ~ 0.2 mg/L、蔗糖浓度为 30 g/L、pH 值范围为 5.4 ~ 6.0，继 代周期为 20 d，增殖系数可达 4.49，有效芽数可达 30 棵 / 瓶。因此，尾巨桉 M8 较适宜的诱导培养基 为：MS + 6-BA 0.2 mg/L + 蔗糖 30 g/L + 卡拉胶 6.8 g/L，可实现腋芽萌发快，污染率少，诱导率高。最优 的增殖培养基为改良 MS + 6-BA 0.2 mg/L + IBA 0.1 mg/L + 蔗糖 30 g/L + 卡拉胶 6.8 g/L，pH 为 5.4 ~ 6.0， 可实现继代苗叶片舒展，生长健壮，提高组培效率，发挥组培快繁的优势。     

激素及支持物对丰花月季快速繁殖的影响

丰花月季的茎段(含腋芽)在MS 6-BA3．000 NAA0．400或MS 6-BA3.000 NAA0.005的培养基上，腋芽能顺利萌发，采用MS 6-BA3.000 NAA0．005可以从无菌苗诱导大量丛生芽，在继代培养中，不同含量的6-BA和NAA在诱导效率上有明显的不同。以沙子替代琼脂作为支持物，诱导初代腋芽的效率比琼脂高，幼苗的生根率和移栽成活率均很高。     

重瓣非洲菊的组培技术研究

取重瓣非洲菊幼小花托 ,以MS为基本培养基 ,附加不同生长调节剂及浓度水平诱导愈伤组织形成不定芽进行组培研究。结果表明 :重瓣非洲菊幼小花托在MS +BA 5 0mg·L-1+NAA 0 5mg·L-1培养基上能很好地诱导形成愈伤组织并分化出不定芽 ,诱导率 91 8% ;MS +KT 5 0mg·L-1+IAA 0 5mg·L-1培养基对不定芽增殖效果较好 ,增殖倍数达4 4 4 ;生根培养基为 1/ 2MS +NAA 1 0mg·L-1,生根率达 98%。选择河泥 +细沙 (2∶1)混合作移栽基质 ,成活率达 90 %以上。     

红姜花的组织培养和快繁技术研究

以红姜花花序抽生的腋芽诱导丛生苗和愈伤组织以及植株再生,结果表明:外植体诱导培养基以MS+6-BA2.0mg·L-1+NAA2.0mg·L-1为宜,不定苗的诱导率可达158.3%;丛生苗继代增殖培养基以MS+6-BA1.0mg·L-1+NAA1.0mg·L-1为宜,增殖倍数可达5.6倍;愈伤组织诱导培养基以MS+6-BA6.0mg·L-1+NAA0.1mg·L-1;植株再生和丛生苗增殖培养基以MS+6-BA1.0mg·L-1+NAA1.0mg·L-1;生根诱导以1/2MS+NAA0.5mg·L-1或1/2MS+NAA0.5mg·L-1+6-BA0.2mg·L-1两种培养基为宜,生根诱导率可达100%。     

心叶球兰组织培养与快速繁殖试验

以心叶球兰叶片为外植体,愈伤组织诱导和继代增殖培养基MS+6-BA2.0mg.L-1+NAA0.5mg.L-1+2,4-D1.0mg.L-1+GA1.0mg.L-1+白糖3%,诱导的愈伤组织多,生长旺盛,增殖倍数为2～3倍;丛芽诱导培养基MS+KT0.5mg.L-1+NAA0.5mg.L-1+GA1.0mg.L-1+白糖3%,芽的诱导率为79.3%;在丛芽增殖及复壮培养基1/2MS+IBA1.0mg.L-1+白糖2%上,有20%～30%玻璃化丛芽转为绿色苗,玻璃化单芽经复壮培养长成绿色苗;诱导生根培养基为1/2MS+IBA0.5mg.L-1+白糖2%,玻璃化生根率为56.4%,淡绿色苗生根率达91.1%。瓶苗移栽基质泥炭土∶珍珠岩∶甘蔗渣(1∶1∶1)的成活率最高,达91.4%。     

软枣猕猴桃组织培养的研究

以软枣猕猴桃腋芽为材料,研究了扩繁增殖和生根的最佳条件。结果表明,增殖培养基以MS 6-BA0.5mg/L ZT 1mg/L为好,增殖倍数可达4.00倍;生根培养基以MS IBA 0.2mg/L较好,生根率达87.0%。     

厚荚相思组培育苗试验

以引种的厚荚相思优树萌芽条为材料进行组织培养快速繁殖试验,结果表明:适合厚荚相思外殖体诱导的培养基为改良MS+BA0 3～0 5mg·L-1+KT0 1～0 5mg·L-1,适合继代增殖培养基为改良MS+BA1 0～1 5mg·L-1+KT1 0～1 5mg·L-1,生根培养基为改良1/2MS+NAA0 5mg·L-1,试管苗的生根率达95%以上。     

Direct shoot bud regeneration from shoot tip explants of <Emphasis Type="Italic">Enicostema axillare</Emphasis>: an important medicinal plant

An efficient protocol has been developed for in vitro propagation of Enicostema axillare using shoot tip explants. The shoot tip explants were cultured on MS medium supplemented with various combinations of (BAP, KIN) and (NAA/IAA & IBA) in different concentrations between 0.5 and 2.0 mg/l for multiple shoot bud induction. The highest percent of (98.51 %) was observed at 1.0 mg/l BAP in combination with 0.2 mg/l KIN while maximum number of shoot buds (8.41 shoots/explant) was noticed on MS medium containing 1.0 mg/l BAP and 0.2 mg/l KIN combination. The highest frequency (90.82 %) of multiple shoot bud regeneration was observed at 1.0 mg/l BAP and 0.5 mg/l IBA with 15.12 ± 2.12 shoots/explants. The regenerated multiple shoots were transferred to half-strength MS medium augmented with different concentration of 0.5–2.5 mg/l IBA for rooting. Among the different concentrations of IBA tested, maximum percentage of rooting (100 %) was observed in MS medium augmented with 1.5 mg/l IBA. The rooted plantlets were successfully transferred into plastic cups containing soil and sand in the ratio of 1:1. Subsequently established in the field conditions with 90 % of survival rate. The protocol developed can be utilized for both large scale plant production and conservation of germplasm of this species. The described method can be successfully employed for large-scale multiplication and in vitro conservation as well as production of secondary metabolites of E. axillare.