彩色马蹄莲组培研究

以彩色马蹄莲块茎芽或芽眼为外殖体,MS为基本培养基,在加BA1-2mg/L NAA0.1mg/L时,有利于丛芽和愈伤组织的诱导。在加BA0.5-1mg/L NAA0.1-0.5mg/L时,既有利于不定丛芽的分化诱导,又利于不定芽的生长,在BA低于0.2mg/L时,有利于不定芽的生长,但对愈伤组织及不定芽的诱导不利,增殖系数低。高浓度BA有利于愈伤组织和芽的分化,低浓度则对芽的生长有利,生根适宜的培养基为加NAA0.3mg/L IAA0.2mg/L。     

不同浓度的外源激素对香石竹组织培养的影响

研究了不同浓度的外源激素对香石竹组织培养过程中愈伤组织诱导、芽分化和芽增殖的影响。结果表明,愈伤组织的诱导与BA与NAA浓度比及KT浓度有关;芽诱导与BA、KT、NAA均有关;芽增殖与BA的浓度及BA和NAA的浓度比有关。MS+BA 0.3 mg/L+KT0.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L培养基对愈伤组织诱导效果最好;最佳的芽分化培养基为MS+BA 0.5 mg/L+KT 0.5 mg/L+NAA 2.0 mg/L,芽分化率达65%;芽增殖培养基以MS+BA 0.3 mg/L+NAA 0.1 mg/L为最佳,增殖芽数最多,玻璃化率最低。     

野薄荷的茎段培养

研究了 BA和 NAA两种激素不同浓度配比对野薄荷 (Mentha haplocalyx briq)茎段培养的影响。结果表明 ,在缺乏 BA或 NAA的培养基上 ,野薄荷不能进行正常生长 ,BA1 .0 mg/L和 NAA0 .8mg/L配合使用有利于愈伤组织和不定根的形成与生长 ,低浓度 BA (0 .5mg/L )与高浓度 NAA (0 .8mg/L)组合有利于芽的高生长和根的伸长生长 ,高浓度的 BA与低浓度的 NAA配比 (BA1 .0 mg/L NAA0 .4mg/L)有利于芽的增殖。以生产无菌苗为目的 ,则以 BA1 .0 mg/L NAA0 .4mg/L为最佳激素配比     

不同BA和NAA浓度配比对藠头芽分化和生长的影响

此试验将藠头鳞茎盘培养在不同BA、NAA浓度配比的MS培养基上,诱导芽的分化和生长。结果显示,BA对藠头芽的分化和生长影响很大,BA浓度过高(>2.0 mg/L)或过低(≤0.5 mg/L)都不利于芽的分化和生长;适当浓度的NAA对芽形成也具有一定的诱导作用。BA1.0 mg/L+NAA1.0或0.6 mg/L时,诱导芽分化和生长的效果明显好于其它处理。     

杨树叶片离体再生系统的构建

以杨树叶片为外植体,MS为基本培养基,使用不同激素不同浓度配比,建立了杨树叶片离体培养植株再生体系。结果表明：叶片的最佳诱导培养基为：MS＋2,4-D 1.0 mg/L＋6-BA 1.0 mg/L;不定芽培养基为：MS＋NAA1.0 mg/L＋6-BA0.5 mg/L。NAA与BA对愈伤组织诱导有调控作用,NAA/BA比值增大有利于不定芽的诱导,但不能超过4∶1;BA与2,4-D关系比较复杂,当2,4-D和6-BA的浓度均为1.0mg/L时,愈伤组织诱导效果最好。     

粉色马蹄莲组织培养研究

以粉色马蹄莲块茎芽、叶和植株为外植体,MS为基本培养基,在加NAA0.2mg/L+BA1～3mg/L时,有利于丛芽和愈伤组织的诱导。在加NAA0.2～0.5mg/L+BA0.5～1mg/L时,既有利于不定丛芽的分化诱导,又利于不定芽的生长。在BA为0.2mg/L时,有利于不定芽的生长,但对愈伤组织及不定芽的诱导不利,增殖系数低。高浓度BA有利于愈伤组织和芽的分化,低浓度则对芽的生长有利。外植体叶和植株在各处理中无显著差异,特别是生长后期。叶组织在培养中大部分死亡,只有极少部分产生愈伤组织。植株在培养过程中叶片逐渐变黄、枯死。     

观赏百合继代培养中芽增殖效果的研究

[目的]研究几种生长调节剂在观赏百合继代培养中对芽的增值效果。[方法]采用组织培养法,在各培养基中分别单独和组合添加不同浓度的BA或KT、GA、2,4-D和NAA,观察记录百合芽的增殖数。[结果]培养基中添加0.1、0.5和1.0 mg/L的BA或KT,对百合芽的增殖具有促进效果,其中添加0.5 mg/L BA对新中心和马可的芽的增值效果显著,42 d时分别比对照增加了290.9%和240.0%;添加0.05、0.10、0.50和1.00 mg/L的2,4-D或GA对百合芽的增殖具有促进效果;0.5 mg/L BA或KT与NAA配合使用时,效果优于BA或KT单独使用,且与0.1 mg/L NAA配合使用时效果最好;0.5 mg/L BA或KT与0.5 mg/L GA配合使用对新中心芽增殖效果最好。[结论]研究为探寻最适合观赏百合继代培养的生长调节剂配方提供了理论依据。     

青菜子叶离体再生体系的建立

以子叶为外植体,研究了苗龄、培养基中Agar浓度、BA与NAA的组配和添加AgNO₃、GA3对子叶产生不定芽的影响.结果表明,5～9d苗龄的外植体最易诱导出不定芽;培养基中BA浓度是影响不定芽形成的关键,BA浓度低于2mg/L,不定芽难以发生,BA6mg/L与NAA0.05mg/L的搭配有利于不定芽形成;在一定范围内不定芽发生频率随着Agar浓度的提高而提高;培养基中添加5mg/L AgNO₃,2～3mg/LGA3可以提高不定芽的发生频率;在此基础上建立了青菜离体再生体系,利用该体系能够获得较高的芽苗再生频率,但存在着青菜基因型间的差异.     

BA、NAA在柽柳离体快繁中的应用

[目的]研究BA、NAA对柽柳丛生芽的诱导、增殖和不定根形成的影响。[方法]将柽柳嫩枝条切成1.5～2.0 cm的小段,接种于诱导培养基MS＋BA 0～6.00 mg/L＋NAA 0～0.50 mg/L上诱导不定芽。[结果]BA、NAA浓度为0时,99%的外植体都在基部茎节产生了1～2条长度为1～5 cm的白色根,侧根稀疏,但均无丛生芽产生,枝叶生长不良。BA浓度为2.00 mg/L、NAA浓度为0 mg/L时最适合诱导不定芽。NAA浓度不变时,随着BA浓度的增加,柽柳丛生芽发生提前,增殖系数也逐渐升高,但茎的分化逐渐受到抑制。MS＋BA 0.50 mg/L＋NAA 0.01 mg/L适合丛生芽增殖。NAA浓度为0.50和1.00 mg/L时,主侧根发生不明显,并且在无根苗基部有愈伤组织产生。采用MS培养基进行柽柳生根培养时,NAA的适宜添加浓度为0.05 mg/L。[结论]该研究为柽柳的组织培养提供了试验依据。     

菊花离体培养体系的优化

对菊花离体培养体系的优化进行了研究,研究结果表明:激素对芽和根系的产生是必需的,其中NAA对能否产生芽具有决定作用,IAA对能否产生根系具有决定作用,6BA能够明显改善根系和芽的生长质量;适合诱导丛生芽的优化培养基为M S 5 m g/l 6BA 0.5m g/NAA 1 m g/l AC,适合生根的最适培养基为M S 1m g/l 6BA 2m g/l IAA;加入适量的AC有利于减少褐化、死亡现象,且能够促进芽和根系的产生及质量的提高。     

盐桦(Betula halophila)愈伤组织的高效诱导和不定芽的分化

设计不同激素、不同水平的单因子试验和正交试验,统计盐桦出愈率、分化率,筛选出诱导盐桦愈伤组织的最适外植体和最适培养基.盐桦愈伤组织高效诱导和不定芽分化的最适外植体为茎段;诱导愈伤组织的最适培养基为:LS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.4;愈伤组织分化抽枝的最适培养基为:LS+BA 0.5 mg/L+NAA0.02 mg/L;高效诱导愈伤组织和不定芽分化的最适培养基为:LS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L.琼脂7;,蔗糖浓度20 g/L.愈伤组织诱导率和不定芽分化率分别达到82;和93.6;以上.     

变异焊菜组织培养及无性系建立的研究

以野生变异焊菜根上部的生长点为外植体,以附加不同浓度的BA、IAA、NAA、2,4-D、GA的MS、1/2MS或1/3MS为培养基,进行了芽伸长生长培养、芽分化培养和试管苗生根培养研究.结果表明:1/2 MS IAA 0.2 mg/L是促进变异焊菜培养芽伸长生长的理想培养基,MS BA 0.5 mg/L NAA 0.1 mg/L GA 0.5 mg/L是变异焊菜芽分化培养的理想培养基,1/3 MS IAA 0.5 mg/L是变异焊菜试管苗生根培养的理想培养基;变异焊菜试管苗移植后,有利的变异性状保持不变.     

胡杨叶片不定芽再生体系的研究

该文以胡杨试管苗叶片为材料 ,进行了不同培养基及不同影响因子对胡杨叶片不定芽再生能力影响的试验 .结果表明 :胡杨叶片再生的最适培养基是MS +BA 0 .5mg L +NAA 0 1～ 0 2mg L +腺嘌呤 4 0mg L +水解乳蛋白 5 0 0mg L +白砂糖 2 5g L +琼脂 5g L ,再生频率达 10 0 % ;叶片培养的最佳取材位置是自茎尖展叶始第 1～ 3片叶 ;叶片正面向上或正面向下接种培养 ,对其形成不定芽无显著影响 ;由丛生芽和愈伤组织两个途径得到的无菌苗上的叶片在再生能力方面没有明显差异 .     

甘蓝下胚轴离体培养直接分化成苗的研究

经正交试验Ｌ_（１６）（４~３）分析了ＢＡ、ＩＡＡ及营养物质ＬＨ对甘蓝下胚轴分化成苗的影响。结果表明：ＢＡ对甘蓝下胚轴分化的作用最显著，ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ，ＩＡＡ０．０１ｍｇ／Ｌ和ＬＨ６００～８００ｍｇ时促进芽的分化，ＢＡ为０．５ｍｇ／Ｌ、ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ以及ＬＨ８００ｍｇ／Ｌ时促进下胚轴长根。甘蓝叶片，下胚轴不宜诱导愈伤组织。     

孟士德薰衣草愈伤组织诱导和植株再生

取孟士德薰衣草叶片、茎段、芽为外植体,设置6组不同激素水平进行组织培养试验,结果显示：以MS＋BA2．0mg·L^-1（单位下同）＋NAA0．1或MS＋BA2．0＋IBA0．15为培养基诱导愈伤组织效果好;茎段的愈伤诱导率高达92．5％;芽的萌动早、愈伤诱导率达80％;叶的诱导效果最差,愈伤诱导率为35％,且极易褐变死亡。愈伤组织在MS＋BA1．0＋IBA0．1培养基上继续培养．形成大量的丛生芽。单个芽在1／2MS＋NAA0．2培养基上进行生根培养,生根率达98％。试验表明芽适合作快速繁殖材料,茎段适合先形成愈伤组织再诱导植株再生。     

胡杨离体培养分化增殖途径的比较研究

采用含 30mg L蔗糖 ,并附加 5 0 0mg L水解乳蛋白和 4 0mg L腺嘌呤的B5培养基为基本培养基 ,就离体条件下胡杨 (PopuluseuphraticaOliv.)茎段、叶片、嫩根以及茎段愈伤组织不定芽分化增殖途径进行研究 .结果表明 ,维持一定的BA与NAA比值对胡杨不定芽的分化增殖较为重要 ,其中茎段和愈伤组织诱导不定芽以附加 0 5mg LBA、0 1mg LNAA的培养基表现最好 .茎段不定芽再生率及愈伤组织分化增殖率分别为 1 0 0 %和 80 % ;离体叶片以添加0 6mg LBA、0 1mg LNAA的诱导效果最佳 ,诱导率高达 1 0 0 % ,且增殖系数为 1 0 7.离体嫩根则以添加 0 5mg LBA、0 2mg LNAA的处理效果最好 ,诱导率为 35 % .采用繁殖周期、增殖系数、有效芽健壮程度、黄化率等指标 ,对胡杨离体培养 4种分化增殖途径进行比较分析表明 ,胡杨离体茎段培养与叶片诱导不定芽是胡杨试管苗生产的两条良好途径     

青岛百合高效离体快速繁殖体系的建立

以青岛百合及麝香百合的鳞片和茎尖为试验材料,研究了外植体的放置方式、鳞片的不同部位、不同的激素浓度及活性炭对百合再分化的影响,成功建立了青岛百合的高频再生体系。结果表明两种百合的最佳外植体部位为中层鳞片的基部,放置方式为凸面接触培养基,青岛百合的最适再生培养基为MS+6-BA1.5mg/L+NAA0.2mg/L,麝香百合的最佳再生培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L,两种百合的最高再生率均达到100%。     

柱花草间接再生体系的研究

[目的]研究柱花草的间接再生体系。[方法]以＂热研2号＂柱花草为材料,研究激素、培养方法、培养条件对外植体脱分化与再分化的影响。[结果]2.0 mg/L NAA能加快柱花草外植体愈伤组织启动,0.1～0.3 mg/L BA有利于外植体脱分化和愈伤组织形成,并能促进芽的再生。NAA与BA配合使用能改善愈伤组织的质量,提高生长速度,促进芽的形成。高浓度NAA与适当浓度BA配合能分化丛生芽。低温短光照预处理能加快外植体愈伤组织启动。低温短光照预处理和昼夜温差预处理均能明显提高外植体分化成芽率,暗培养能促进愈伤组织分化和芽的生成。[结论]NAA与BA配合使用时表现出互作效应,其互作效应受光温条件的影响。     

文心兰丛生芽组培快繁研究初报

笔者主要采用正交设计安排试验,探索通过以丛生芽途径再生植株的方法进行快速繁殖。研究的主要问题集中在不同基本培养基类型、不同激素配比和用量的选择、不同添加物的选择几个方面对丛生芽增值的影响。以期筛选出最优技术参数组合,提高丛生芽增殖系数,建立文心兰最优再生体系。结果表明:影响丛生芽增殖的显著因子分别是基本培养基、细胞分裂素BA、生长素NAA。最适宜的培养基配方是MS BA3.0mg/L或4.0mg/L NAA0.4mg/L或0.6mg/L 椰乳汁150.0ml/L或番茄汁150.0ml/L Vc0.2mg/L 活性炭1.0g/L 糖30.0g/L 琼脂8.0g/L pH5.4。     

哈密大枣叶片不定芽再生体系研究

建立哈密大枣叶片离体再生体系,为遗传转化奠定基础.采用哈密大枣叶片为外植体,研究基本培养基、激素浓度、暗培养时间、AgNO3等因素对离体叶片不定芽诱导的影响,并获得再生植株.MS、NN69、WPM三种培养基相比较,NN69更适合做为诱导愈伤组织的基本培养基;TDZ诱导叶片再生不定芽的效果显著优于 BA;再生培养基中添加1 mg/L AgNO3对不定芽的形成有显著的影响（P ＜0．05）;培养初期经过2周避光培养更有利于提高再生效率;采用10 mg/L维生素 C浸泡15 min可以防止褐化,并能提高不定芽再生率;培养基中添加聚乙烯吡咯烷酮（PVP）或者维生素C,不定芽再生率无显著提高（P ＞0．05）;培养基添加活性炭（AC）会抑制外植体的分化.叶片在 NN69＋1．0 mg/L TDZ＋0．20 mg/L IBA＋AgNO31．0 mg/L培养基上,暗培养2周后转入光照培养,出芽外植体转入 MS＋1 mg/L 6GBA＋0．20 mg/L IBA 不定芽再生效果最好.不定芽生长至3 cm 以上时,转至0．40 mg/L IBA的1/2MS培养基上进行诱导生根.