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百子莲组培快繁与植株再生 总被引:3,自引:0,他引:3
以百子莲为试材,研究了百子莲的无菌播种、组培快繁及植株再生。结果表明:百子莲成熟种子最佳的消毒方法:70%酒精消毒1min,然后用0.1%HgCl2灭菌3min。将种子接种在不添加植物调节剂的MS培养基上,发芽状况良好;切取幼苗基部进行增殖培养,增殖的最佳培养基为MS+6-BA 4.0mg/L+NAA 0.1mg/L。最佳外植体为去根的无菌苗,最佳不定芽分化培养基为MS+6-BA 4.0mg/L+NAA 0.1mg/L,其不定芽分化率达92%。在1/2MS+IAA0.5mg/L培养基上,生根率达80%。驯化移栽后,其成活率达90%。 相似文献
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百子莲的再生体系试验初报 总被引:1,自引:0,他引:1
以百子莲(Agapanthus africanus)的根茎部和叶片为外植体进行离体培养,以MS为基础培养基,附加不同浓度的植物生长调节剂诱导根茎部直接再生不定芽;同时以百子莲幼嫩叶片和种子进行组织培养作对比试验。结果表明,成熟的根茎接种在添加BA 4.0mg/L和NAA 0.1mg/L的MS培养基上不定芽分化率达最高,平均外植体不定芽个数在10个以上。将叶片分别接种到添加不同浓度2,4-D和MS+BA 4.0mg/L+NAA 0.1mg/L的培养基中,结果没有诱导出不定芽。诱导百子莲生根实验表明IBA对百子莲的生根没有促进作用。 相似文献
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斑点大吴风草叶片再生体系的建立 总被引:1,自引:1,他引:0
现以斑点大吴风草为试材,系统研究了灭菌方式、激素等因子对叶片再生的影响,建立了斑点大吴风草不定芽的高频再生体系。结果表明:建立斑点大吴风草无菌培养物的较好方法是0.1%HgCl2加吐温-80处理叶片10 min;适宜的不定芽诱导培养基MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 1.0 mg/L;最佳的不定芽增殖培养基是MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L;其增殖系数可达到6.05;其芽长至2~3 cm时,最佳的生根培养基是1/2MS+NAA 0.05 mg/L,生根率达到100%,最终得到完整的植株。该再生体系可作为基因转化的受体系统。 相似文献
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以花魔芋根状茎为外植体材料,比较不同激素浓度配比对其愈伤组织、不定芽分化以及生根的影响,以期筛选出最佳的培养基配方。结果表明:诱导花魔芋根状茎愈伤组织分化的最佳培养基配方为MS+1.0mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,诱导率高达90.0%,增重倍数为4.3;诱导不定芽分化的最佳培养基配方为MS+2.0 mg/L6-BA+0.5 mg/L NAA,分化率高达86.7%,增殖系数为2.5;诱导不定芽生根培养基配方为1/2 MS+1 mg/L NAA,生根率为80.0%,平均生根数为21条。通过以上研究,4个月可生产出优质的魔芋组培苗。 相似文献
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三种玉簪新品种离体快繁技术的研究 总被引:3,自引:0,他引:3
以3种玉簪"金头饰"(H.‘Gloden Tiaia’)、"小黄金叶"(H.‘Gloden Cadet’)和"金鹰"(H.‘Gloden Eagle’)的幼嫩花蕾为外植体诱导不定芽,成功的建立了3个品种的离体快繁体系。结果表明:不定芽诱导最佳培养基为MS+6-BA 2.5mg/L+NAA 0.2mg/L;在增殖培养基中,"金头饰"最佳增殖培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L;"小黄金叶"最佳增殖培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.2mg/L;"金鹰"最佳增殖培养基MS+6-BA 4.0mg/L+NAA0.2mg/L;无生长调节剂的MS为"金鹰"的最佳生根培养基,生根率达100%以上;"小黄金叶"在培养基MS+NAA 0.5mg/L中生根率达到100%以上;"金头饰"在培养基MS+NAA 0.3mg/L中生根率也达到100%以上。其移栽成活率均为100%。 相似文献
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用大花虎刺梅的外植体进行组织培养研究。结果表明:最佳外植体诱导培养基为A6:MS+2.0mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA,最佳不定芽诱导培养基为B2,即MS+0.5mg/L6-BA+0.1mg/L NAA,增殖效果最好的培养基为C2:MS+0.5mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA,最适宜大花虎刺梅的生根培养基为D2:1/2MS+0.1mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA。 相似文献
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铁皮石斛快速繁殖体系研究 总被引:4,自引:0,他引:4
以铁皮石斛愈伤组织为试材,比较培养基组分、植物激素种类、浓度及添加剂等对铁皮石斛增殖、壮苗及生根的影响。结果表明:愈伤组织增殖最适培养基为:MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;不定芽诱导的最适培养基:1/2MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;幼苗壮苗的最适培养基为:MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L+香蕉汁30%;根诱导培养基:MS+IBA0.4 mg/L+NAA 0.3 mg/L。 相似文献
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以厚藤不同外植体为试材,MS为基本培养基进行组织培养,研究6-BA和NAA不同浓度组合对不同外植体愈伤组织诱导、不定芽分化及增殖的影响,以筛选出适合厚藤组织培养的最适外植体和培养基。结果表明:厚藤最佳的愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA 0.75mg/L+NAA 0.25mg/L,最佳外植体为叶片;不定芽诱导培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1~0.5mg/L;在MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.3mg/L培养基中增殖倍数最高。在1/2MS培养基上培养,生根率达87.5%。 相似文献
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以一品红腋芽、顶芽、茎段、嫩叶为初次诱导外植体,对一品红的组织培养途径进行研究,建立了一品红植株再生体系.结果表明:组织培养的取材部位为腋芽、顶芽和茎段.诱导愈伤组织外植体为茎段,培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L+2,4-D 2.0 mg/L+蔗糖30 g/L.诱导丛生芽的外植体为腋芽、顶芽和愈伤组织,培养基配方为腋芽、顶芽:MS+6-BA 0.6mg/L+NAA0.1 mg/L+蔗糖30 g/L;愈伤组织:MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L.丛生芽继代增殖的培养基配方为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L+蔗糖30 g/L.生根培养基配方1/2MS+NAA 1.0 mg/L+蔗糖30 g/L. 相似文献
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以金钟连翘带芽茎段为外植体,基于MS培养基,添加不同浓度的6-BA和IBA进行离体培养。初代培养的最佳培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.1mg/L。增殖和生根的最适培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.1mg/L。 相似文献
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以番茄种子为试材,采用正交实验方法配制不同的培养基,研究不同浓度的6-BA、NAA、IBA对不定芽诱导及丛生芽增殖的影响.结果表明:愈伤组织诱导的适宜培养基为:MS+6-BA 2.0mg/L+IBA 0.3 mg/L+蔗糖30 g/L;不定芽诱导适宜培养基为:MS+6-BA3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L+蔗糖30 g/L;丛生芽增殖的适宜培养基为:MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.01 mg/L+蔗糖30 g/L;生根培养基为:1/2 MS+NAA 0.6mg/L+蔗糖30 g/L. 相似文献
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不同植物生长调节剂对黄秋葵组织培养的影响 总被引:1,自引:0,他引:1
以黄秋葵无菌实生苗的带一叶一芽的茎段为外植体,研究了不同植物生长调节剂处理对丛生芽诱导和不定芽生根的影响。结果表明:当外植体接种于1/2MS基本培养基中,一定的浓度范围内,IAA浓度的增加显著促进了黄秋葵茎段的分化率和增殖率,而6-BA的存在提高了IAA的这种促进作用,但并不明显,最优组合为IAA 1.0mg/L+6-BA 2.0mg/L。待丛生芽生长到1cm以上,切出单个不定芽,接入添加不同NAA浓度的1/4MS基本培养基中,发现生根率和生长状况在NAA 0.1mg/L时表现最好。 相似文献
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雏菊组织培养及快速繁殖研究 总被引:1,自引:0,他引:1
以雏菊的根茎为试材,进行了根茎芽诱导和分化、分化芽的继代和生根、试管苗的移栽和移植的研究,建立起快速繁殖体系。结果表明:MS+6-BA 0.2 mg/L+GA30.5 mg/L+IAA0.2~0.5 mg/L是根茎诱导芽的理想培养基;MS+6-BA 1.0 mg/L+GA30.5 mg/L+NAA 0.1mg/L是根茎诱导芽分化培养和分化增殖培养的理想培养基;1/2MS+NAA 0.1 mg/L+IAA 0.4mg/L是分化芽生根培养的理想培养基;在温室中试管苗的移栽成活率为93.6%,移植到花坛上的试管苗保持了生长旺盛的优良性状。 相似文献
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以春秋姜黄根茎腋芽为外植体,采用添加6-BA、NAA、TDZ不同浓度和不同组合的MS基本培养基,进行不定芽诱导、丛生芽继代增殖和生根、壮苗培养等研究,探索其组织培养和离体快繁技术的适宜条件。结果表明:MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.5mg/L的培养基腋芽诱导率高达86.7%,且生长速度快;MS+6-BA 2.0mg/L+TDZ 0.1mg/L最有利于芽增殖,继代3次后,增殖系数达14.1;MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L培养基的壮苗生根效果最好。试管苗长至6cm时移栽,成活率可达90%以上。 相似文献