利用Fhb1基因功能标记选择提高黄淮冬麦区小麦品种对赤霉病的抗性

赤霉病已上升为黄淮冬麦区的主要病害, 提高小麦品种对赤霉病的抗性成为该麦区主要的育种目标之一。宁麦9号、生选6号、建阳798、建阳84、苏麦3号和宁麦13均携带Fhb1基因, 对赤霉病表现中抗水平以上。本研究以这6个品种(系)为供体, 分别与高感赤霉病的周麦16矮败小麦近等基因系杂交和回交, 构建6个回交群体。利用Fhb1基因的KASP标记在回交后代中进行基因型分析, 分别选择携带和不携带Fhb1基因的可育株, 对后代株系进行单花滴注接种鉴定和田间病圃自然鉴定。回交后代携带Fhb1家系整体抗性达到中感, 比不携带Fhb1家系的平均病小穗数低4.2 (P < 0.01), 平均病情指数低4.0, 比轮回亲本周麦16的平均病小穗数和病情指数分别低8.1 (P < 0.01)和28.4 (P < 0.01)。不同供体品种(系)回交后代在赤霉病抗性上表现出明显差异, 以生选6号为供体的回交后代家系抗性表现最好。本研究表明, 利用Fhb1基因分子标记辅助选择技术能够有效地提高黄淮冬麦区小麦品种的赤霉病抗性水平。     

南农92R系统白粉病抗源多抗性鉴定及其抗条锈性遗传分析

对南农92R系统白粉病抗源进行了多抗性鉴定,并对其抗条锈性进行了遗传分析。结果表明:4份南农92R系统白粉病抗源,不仅对白粉病多个小种免疫,而且对中国当前优势条锈菌生理小种均表现免疫,其中的92R178和92R137亦对供试3个叶锈菌优势小种均表现高抗至免疫。抗条锈性遗传分析显示92R089, 92R137分别具有一对完全显性的抗条     

小麦白粉病多基因新抗源

采用常规杂交方法对含有效抗白粉病基因Pm2、Pm6、Pm8、Mld的抗源材料,用推广良种扬麦3号和常用赤霉病抗源亲本苏麦3号进行抗白粉病基因的转育和累加,创新出一批含单个或多个抗白粉病基因、兼抗赤霉病和锈病,农艺性状亦较好的抗源亲本,推荐利用。     

国审品种内麦836小麦栽培技术规程

内麦836小麦是四川省内江市农科院以自育小麦新品系5680为母本,南京农业大学普通小麦一簇毛麦6VS/6AL易位系92R33为父本杂交选育而成.2008年9月通过国家农作物品种审定委员会审定,审定编号:国审麦2008001.适宜在四川、贵州中部和西部、重庆东部、云南中部、甘肃徽成盆地川坝河谷种植.内麦836的突出特点:高产、优质兼抗条锈病、白粉病.四川省农业科学院植保所多年抗病性鉴定结果为:条锈病、白粉病免疫,感叶锈病,中感赤霉病.     

国宫品种内麦836小麦栽培技术规程

内麦836小麦是四川省内江市农科院以自育小麦新品系5680为母本,南京农业大学普通小麦一簇毛麦6VS／6AL易位系92R33为父本杂交选育而成。2008年9月通过国家农作物品种审定委员会审定,审定编号：国审麦2008001。适宜在四川、贵州中部和西部、重庆东部、云南中部、甘肃徽成盆地川坝河谷种植。内麦836的突出特点：高产、优质兼抗条锈病、白粉病。四川省农业科学院植保所多年抗病性鉴定结果为：条锈病、白粉病免疫,感叶锈病,中感赤霉病。     

11份贵州省小麦区试品种对叶锈病、条锈病和白粉病的田间表型抗病性鉴定

采用大田品种诱发结合自然发病的方法,鉴定2020—2021年参加贵州省小麦区域试验的小麦品种（系）对锈病和白粉病的抗病性情况,分析11个品种对锈病和白粉病的抗性与表型性状的相关性,为评估区试小麦品种对锈病和白粉病的抗性及小麦白粉病和锈病抗性育种提供支持。在11个参加小麦区试材料中,表现为抗白粉病的有10个品种,占11份鉴定材料的90.91%,其中7个品种表现为免疫或高抗病性、3个品种表现为中抗病性;11个品种都表现为抗条锈病,占鉴定品种的100%,其中1个品种表现为免疫、9个品种表现为高抗、1个品种表现为中抗;11个品种都表现为抗叶锈病,占鉴定品种的100%,其中1个品种表现为完全免疫、6个品种表现为高抗、4个品种表现为中抗;在参加试验的11个品种中有10个品种对叶锈病、条锈病和白粉病均表现抗性,占鉴定品种的90.91%,11个区试小麦品种的抗病性存在较小差异。筛选鉴定出对3种病害表现高抗性的5个品种,分别为贵农麦1803、贵农麦20-1、黔1104、贵农19(CK)和贵农麦19-9,可作为抗病育种的优异备选材料。     

贵花3号小麦新品系的特征特性及高产栽培技术

贵花３号小麦新品系的特征特性及高产栽培技术杨昌河，杨正元，罗应春（贵州农学院）１贵花３号小麦新品系的选育贵花三号小麦新品系是以早熟，抗赤霉病的矮秆春性品种“苏麦３号”为母本，用晚熟，高秆，抗白粉病，５锈病，强冬性的ＭａｎｓＴｅｍｐｌａｒ为父本杂交（属...     

贵协3号小麦衍生品种（系）的赤霉病抗性评价及农艺性状分析

小麦赤霉病是一种对小麦生产危害很强的世界性真菌病害,利用抗赤霉病品种是减轻危害的有效手段之一,但是具有赤霉病抗性的小麦种质很少。本研究鉴定筛选出适合黄淮麦区中抗赤霉病的种质材料漯抗1号、漯抗4号和漯抗6号。3份材料的发病小穗率分别是19.0%、20.9%和20.2%,与苏麦3号（13.8%）差异显著,但与扬麦158（19.2%）差异不显著。从平均严重度和发病小穗率分析,漯抗1号、漯抗4号和漯抗6号的赤霉病抗性为中抗,与扬麦158相当。从耐寒性、株高、千粒重、穗粒数和小穗密度等方面对漯抗1号、漯抗4号和漯抗6号分析表明,漯抗6号与周麦22无显著差异,漯抗6号更适用于黄淮麦区小麦育种。     

望水白和苏麦3号构建的DH群体赤霉病抗性比较

利用抗病品种望水白和苏麦3号分别与感病品种Alondra’s杂交，F1花药培养诱导单倍体，经染色体加倍构建了2个DH群体。2001－2003年连续3年在赤霉病常发重病区福建省建阳市进行了赤霉病抗性鉴定。通过聚类分析把2个DH群体分成稳定的抗病DH系、稳定的感病DH系、稳定的中抗DH系以及抗性不稳DH系4类，4种类型在2个DH群体中的比例     

基因型和环境对小麦赤霉病抗性的响应及其对千粒重的影响

为探究基因型和环境对小麦赤霉病抗性表达的响应,分析赤霉病与千粒质量间的关系并筛选抗(耐)赤霉病小麦种质,以不同遗传背景的72份小麦品种(系)在自然鉴定条件下对其赤霉病病粒(率)和千粒重进行研究。结果表明,不同小麦品种(系)间赤霉病病粒率变幅为0.08%~26.13%,铜陵点病粒率27.93%阜南点病粒率(2015年度)6.86%阜南点病粒率(2014年度)3.38%;不同来源小麦品种赤霉病病粒率依次为河南山东安徽江苏北方部分省(市)南方部分省(市),平均病粒率分别为16.38%、15.73%、12.03%、9.59%、7.02%和0.80%;千粒重与赤霉病病粒率呈极显著负相关(R2=0.317 6**),病粒率越高,千粒重越低。初步筛选出尧麦18、扬麦158、扬辐麦5242、镇麦168、瑞华168、明天0402,早丰525、皖科06725、安09174、先麦10号、豫麦18-99、益科麦5号、安0817和浩麦1号14份可供沿淮、江淮地区小麦赤霉病抗性育种利用的种质。     

基于机器视觉技术的黄瓜叶片白粉病识别

黄瓜叶片白粉病染病程度的判定,对于确定病灾预防措施意义重大。笔者采用机器视觉技术对叶片病斑进行有效识别,借助人工神经网络完成对叶片染病状态的模式分类。根据病斑的规模及面积分布提出了白斑区域面积比、平均白斑面积、白斑覆盖率等特征参数,借助这3个特征参数实现了叶片染病程度的定量分析,并借助人工神经网络完成了对叶片染病状态的模式分类。4类白斑叶片的正确识别率分别为88%、91%、92%、94%。     

豌豆抗白粉病资源筛选及分子鉴定

由豌豆白粉菌引起的白粉病是豌豆生产上的重要病害,利用抗病品种是防治该病害最经济有效的方法。本研究在控制条件下苗期接种鉴定了396份豌豆资源对2个不同地理来源的豌豆白粉病菌分离物EPBJ和EPYN的抗性,用4个与豌豆抗白粉病基因er1连锁的SCAR标记对66份免疫或抗病资源进行标记基因型鉴定。结果表明,在鉴定的396份资源中,有101份资源表现免疫或抗病,其中对分离物EPBJ和EPYN免疫的资源分别为59份(14.9%)和60份(15.2%),对2个分离物均免疫的资源有54份(13.6%);在鉴定的82份中国资源中,有8份对2个分离物均表现免疫。分子标记将66份免疫或抗病资源鉴定为13个标记基因型,同一地理来源的抗性资源分属不同的标记基因型,其中8份来自中国云南的抗性资源分属7个标记基因型。研究表明,中国存在有效的豌豆白粉病抗源,抗性资源具有丰富的遗传多样性。     

不同簇毛麦6VS染色体臂的白粉病抗性特异功能标记的开发及应用

小麦6VS·6DL易位系Pm97033和6VS·6AL易位系92R137中的6VS染色体臂来自不同的簇毛麦种质,均表现良好的白粉病抗性,本研究利用分子标记对这2个易位系所包含抗病基因的异同进行了鉴定。利用与Pm21抗白粉病相关的丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶Stpk-V基因(GenBank登录号为HQ864471.1)的基因组和cDNA序列为基础,在包含至少1个内含子的2个编码区设计引物,从Pm97033中扩增获得特异的多态性片段。为进一步提高特异性和扩增的稳定性,对特异扩增片段测序并重新设计引物,扩增筛选获得2个引物对,其中PK-F1/PK-R可专一扩增6VS·6DL易位系Pm97033及其抗病亲本,而PK-F2/PK-R可同时特异扩增2个不同来源的簇毛麦6VS染色体,但二者间的特异片段具有多态性。利用这2对引物,对系谱中包含6V(6D)和6VS·6AL、抗白粉病的小麦品系CB037进行检测,发现仅出现与6VS·6AL易位系相同的簇毛麦扩增片段,不存在簇毛麦No. 1026 (Pm97033的6VS供体)的扩增片段。基因组原位杂交结果表明,CB037仅含1对小麦-簇毛麦的易位染色体,用已报道的分子标记检测证明易位涉及的小麦染色体为6A,与本研究开发的分子标记检测结果相吻合,表明CB037携带的白粉病抗性基因来自6VS·6AL易位系92R137,其白粉病抗性可能与Pm97033具有不同的遗传基础。     

两个抗小麦白粉病新基因的遗传分析与染色体定位

YU25是从八倍体小偃麦TAI7047与小麦栽培品种川麦107杂交后代中选育出的对白粉病免疫的小麦育种新材料。以感白粉病小麦品种MY11与YU25杂交和回交的后代F₁、F₂、BC₁F₁和BC₂F₁为材料,采用四川省当前流行的小麦白粉病优势生理小种人工接种,对YU25的白粉病抗性进行了遗传分析。结果表明,YU25含有2对表现免疫反应和高抗反应的显性抗病基因,暂命名为PmE(免疫)和PmYU25(高抗)。用294对小麦微卫星引物和221个F₂植株,对这2个基因进行连锁分析,发现小麦微卫星标记Xgwm-297-7B与PmE基因的遗传距离为13.0 cM,而Xgwm-210-2D与PmYU25基因的遗传距离为16.6 cM,因此将PmE和PmYU25分别定位在7BS和2DL上。根据系谱和基因位点分析,推断PmE和PmYU25均为起源于中间偃麦草、不同于已知的抗小麦白粉病基因的2个新基因。小麦育种新材料YU25含有可能来源于小麦-中间偃麦草的染色体多重易位,其细胞学基础和在实际育种中的应用值得进一步研究。     

Resistance to powdery mildew in wild emmer (Triticum dicoccoides Körn.)

Summary Wild emmer from 73 collection sites, including 107 accessions from Israel, two from Lebanon and one from Turkey, were evaluated for resistance to powdery mildew in field nurseries in Israel and the Netherlands.The wild emmer entries displayed a diversity of responses to powdery mildew infection, ranging from high resistance to complete susceptibility. Most entries were resistant in at least one of the nurseries; several entries proved to be resistant in all the tests.Comparing the reactions of 47 wild emmer accessions tested in six nurseries, 11 markedly different patterns were discerned, indicating the probable presence of several different resistance genes.Genes for resistance to powdery mildew appear to be very common in wild emmer indigenous to Israel. Resistance was found in accessions from most collection sites, in all the geographic regions represented in the collection.The common occurrence of resistance and the apparent diversity of genotypes makes wild emmer a rich gene-pool for resistance to powdery mildew. Since genes for resistance to wheat pathogens can be quite readily transferred to cultivated wheat, wild emmer may be utilized as a valuable source of powdery mildew resistance in wheat breeding.     

小麦新品种“山农20”抗病基因的分子检测

山农20是2011年和2012年分别通过国家黄淮南、北片审定的小麦高产多抗新品种,在国家区试抗病性鉴定和生产中都表现出良好的抗黄淮麦区主要病害的特性。本研究利用与小麦抗白粉病、条锈病、叶锈病、纹枯病基因和抗赤霉病主效QTL紧密连锁的SSR、SCAR、STS等标记对该品种进行了分子检测,发现山农20含有6个抗白粉病基因(Pm12、Pm24、Pm30、Pm31、Pm35和Pm36),6个抗条锈病基因(Yr5、Yr9、Yr15、Yr24、Yr26和YrTp1),2个抗叶锈病基因(Lr21和Lr26),1个抗纹枯病基因(Ses1),但未检测到抗赤霉病主效QTL。分子检测结果部分解释了山农20的优良抗病性,也为利用分子标记辅助选择培育抗病稳产小麦新品种提供参考。     

12个小麦品种(系)白粉病抗性的遗传分析

利用17个不同来源和毒力的白粉菌菌株对12个小麦品种(系)进行苗期抗性鉴定和抗病性遗传分析,同时利用Pm2和Pm8基因的特异分子标记检测了相应基因。供试的12个品种至少能够抗11个白粉菌菌株。用E09、E20和Bg2菌株接种F₂群体,抗感植株分离比例和适合性测验证明这12个品种对不同白粉菌菌株的抗性均受1对显性基因控制。抗谱分析和基因紧密连锁分子标记(Xcfd81)分析表明良星66很可能含有Pm2或其等位基因。ω-黑麦碱基因(1RS染色体)和Glu-B1基因(1BS染色体)特异分子标记分析结果证明,山农20和郑麦9962含有T1BL·1RS易位染色体,即可能携带Pm8基因。由于Pm8基因对大多数菌株表现感病,所以这2个品种除Pm8外,还具有其他抗病基因。偃展4110与天民668对参试菌株的反应型表现一致,其他材料对不同菌株的反应型表现不同。     

利用SNP芯片和BSA分析规模化定位小麦抗白粉病基因

规模化定位小麦品种携带的抗白粉病基因对于抗病性种质创新和新品种选育具有重要的意义。本研究采用Illumina Infinium iSelect 90k SNP芯片结合集群分离分析法(bulked segregate analysis,BSA)对36个河南省小麦新品系携带的抗白粉病基因进行了定位。SNP芯片检测表明,在24个小麦品系构建的抗、感池DNA间可检测到一个明显富集的SNP峰,表明其可能携带单一主效抗白粉病基因;在其他12个小麦品系构建的抗、感池DNA间可检测到多个SNP峰,推测其可能含多个抗白粉病基因。有26个小麦品系在2AL染色体上检测到的SNP数目最多,推测其携带位于2AL染色体上的Pm4b抗白粉病基因。开发出与2AL染色体上抗白粉病基因紧密连锁的分子标记Xwggc116,可用于这些小麦品系中抗白粉病基因的分子检测。研究结果表明高通量SNP分析技术平台可以用来规模化定位小麦品种中的抗白粉病基因,明确了河南省抗白粉病小麦品系中携带Pm2、Pm4b、Pm21和新1BL/1RS易位等有限的抗白粉病基因,抗病基因资源非常狭窄,亟需引进新的多样化抗病基因资源,拓宽遗传基础,培育抗病小麦新品种。     

Identification and chromosomal locations of novel genes for resistance to powdery mildew and stripe rust in a wheat line 101-3

Wheat powdery mildew and stripe rust, caused by Blumeria graminis f.sp.tritici (syn. Erysiphe graminis f.sp.tritici) and Puccinia striiformis Westend., respectively, are two important fungal diseases of wheat in many regions in the world that cause significant annual yield losses. In the present study, a dominant powdery mildew and a dominant stripe rust resistance gene in wheat line 101-3 which derived from the progenies of the wide cross between common wheat and Dasypyrum villosum Candary L., was located on chromosome 6B and 1B, respectively, by monosomic analyses. The two genes are different from known resistance genes on chromosome 6B for powdery mildew and 1B for stripe rusts, suggesting that the two genes might be novel resistance genes for powdery mildew and stripe rust, respectively. It is uncertain whether the two genes are allelic or lined with other resistance genes located on chromosome 6B for powdery mildew and 1B for stripe rust. Further allelism tests are necessary to determine the relationships between the resistance gene and other genes located on chromosome 6B for powdery mildew and 1B for stripe rust through molecular markers.